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wb原理最新视觉报道_wb实验的原理和步骤(2024年11月全程跟踪)

内容来源:卡姆驱动平台所属栏目:热点更新日期:2024-11-29

wb原理

WB实验详细步骤:从零开始到结果解析 蛋白免疫印迹(Western blotting 或 Immunoblotting)是一种常用的蛋白质检测技术,广泛应用于分子生物学和生物化学实验中。以下是详细的实验步骤,帮助你从零开始完成WB实验。 𐟧ꠥꌥŽŸ理 蛋白免疫印迹技术主要由三部分组成:凝胶电泳、样品印迹和免疫学检测。 1️⃣ 凝胶电泳:首先进行SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳,使待测样品中的蛋白质按分子量大小在凝胶中分成条带。 2️⃣ 样品印迹:将凝胶中的蛋白质转移到固相支持物上,常用的材料有硝酸纤维素膜(NC膜)和PVDF膜。转移方法多为电泳转移,分为半干法和湿法,现在多采用湿法。 3️⃣ 免疫学检测:用特异性的抗体检测已经印迹在膜上的相应抗原。免疫检测方法可以是直接的和间接的,现在多用间接免疫酶标法。具体步骤如下: 用特异性的第一抗体杂交结合。 再用酶标的第二抗体(如碱性磷酸酶(AP)或辣根过氧化物酶(HRP)标记的抗第一抗体的抗体)杂交结合。 加酶的底物显色,或者通过膜上的颜色或X光底片上曝光的条带来显示抗原的存在。 𐟓 实验步骤 准备样品:将待测蛋白质样品进行处理,使其适合进行SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳。 进行凝胶电泳:将处理好的样品加入到凝胶中,进行电泳分离。 样品印迹:将分离好的蛋白质条带转移到硝酸纤维素膜或PVDF膜上。 免疫学检测:用特异性的第一抗体和酶标的第二抗体进行杂交,最后加酶的底物显色。 结果解析:观察膜上的颜色或X光底片上的曝光条带,分析实验结果。 通过以上步骤,你就可以完成一次WB实验,并得到相应的蛋白质表达水平检测结果。

WB原理详解,科研新手必看! Western blot技术,也被大家称为蛋白质免疫印迹试验,是一种非常重要的实验技术。它能帮助我们鉴定并半定量分析细胞或组织中的特定蛋白质。这项技术主要包括七个关键步骤,分别是:从样本中提取蛋白质、对提取的蛋白质进行定量、利用SDS-PAGE电泳技术分离蛋白质、通过电转印将蛋白质转移到膜上、对膜进行封闭处理、让抗原与抗体发生免疫反应,以及最后进行蛋白质的检测。 大多数科研新手都会接触到WB实验,今天就为大家详细解释这些步骤的原理,帮助大家更好地理解Western blot技术的运作原理。 提取蛋白质 𐟧슩斥…ˆ,我们需要从样本中提取蛋白质。这个过程通常涉及到使用一些化学试剂,如蛋白酶抑制剂和去污剂,以确保蛋白质的完整性和纯度。 蛋白质定量 𐟓 接下来,我们对提取的蛋白质进行定量。这一步非常重要,因为我们需要确保每个样品中的蛋白质含量一致,以便进行准确的比较。 SDS-PAGE电泳 𐟚€ 然后,我们利用SDS-PAGE电泳技术分离蛋白质。在这个过程中,蛋白质会根据其大小和电荷在凝胶中移动,从而分离出不同的蛋白质条带。 电转印 𐟔„ 接下来,通过电转印将蛋白质转移到膜上。这个过程类似于复印机的工作原理,将蛋白质从凝胶转移到膜上,以便进行后续的免疫反应。 封闭处理 𐟚犥œ訆œ上进行封闭处理。这一步是为了减少非特异性结合,提高实验的准确性。封闭剂通常是一些高浓度的蛋白或非特异性抗体。 免疫反应 𐟦  然后,让抗原与抗体发生免疫反应。这个过程涉及到将膜与含有特定抗体的溶液孵育,从而形成抗原-抗体复合物。 检测蛋白质 𐟔 最后,进行蛋白质的检测。我们通常使用一些显色剂或荧光染料来标记抗原-抗体复合物,从而在膜上形成可见的条带。 通过这些步骤,我们就能准确地鉴定并半定量分析细胞或组织中的特定蛋白质了。希望这篇详细的Western blot原理解析能帮助大家更好地理解这项重要的实验技术!

WB操作指南:轻松掌握核心原理 几页笔记带你搞懂WB的核心原理和操作必要性,跟着我一起战胜西方印迹吧!(字有点丑,大家凑合着看吧)#wb

𐟧엂、ELISA、IHC全解析𐟔 𐟒‰免疫印迹(WB)、免疫组化(IHC)和酶联免疫吸附试验(ELISA),这三大免疫学实验技术,你了解多少?今天就来一探究竟! 𐟔엂(免疫蛋白印迹法Western Blot),是检测蛋白质特性、表达与分布的利器。通过SDS-PAGE分离蛋白质,再利用电转仪转移到固相载体上,通过抗原-抗体-标记物显色来检测样品,定性和半定量都靠它啦! 𐟧쉈C(免疫组化Immunohistochemistry),融合了免疫学原理和组织学技术,让抗原在组织或细胞内无处遁形。通过化学反应使标记抗体的显色剂显色,定位、定性及定量都轻松搞定! 𐟒ᅌISA(酶联免疫吸附试验Enzyme linked immunosorbent assay),则是用到了免疫学原理和化学反应显色。与IHC不同,它主要检测血清、血浆等样品,操作简便,定量准确,是分泌性蛋白检测的首选哦! 𐟔这三大实验技术各有千秋,WB与IHC技术相比,定量可能更加准确;而ELISA与免疫组化技术相比,定量最准确。选择哪种技术,就看你的实验需求啦!

史上最全WB实验操作及原理讲解③ Western Blot 实验通常使用SDS-PAGE进行电泳,根据目的蛋白的分子量选择合适的凝胶浓度。以10%的SDS-PAGE自制胶为例,以下是详细的操作步骤和注意事项: 制备凝胶 𐟧ꊨㅩ…好灌胶的模具,按照配方配置分离胶(适量的丙烯酰胺溶液、10% SDS、分离胶缓冲液),加入适量的过硫酸铵和TEMED,轻轻搅拌(不要产生气泡)后缓慢加入到模具中。再在页面上小心注入一层水,以阻止氧气进入凝胶溶液中,静置40分钟。待凝胶聚合后,分离胶和水层出现一个清晰的界面,吸尽分离胶上的水。 同样按比例配置浓缩胶(浓缩胶浓度较分离胶低),缓慢加入分离胶的上面,直至灌满。将梳子插入凝胶内,注意不得在梳子齿尖留有气泡,静置60分钟以上待凝胶聚合后拔出梳子。 注意事项及原理 𐟓‹ 分离胶浓度:不同的分离胶浓度对不同的目的蛋白分子量的分辨率不一样,所以Western Blot中分离胶浓度的选择取决于目的蛋白分子量。 过硫酸铵和TEMED的量:聚丙烯酰胺(PAGE)是由丙烯酰胺聚合形成的高分子,这个聚合反应是自由基聚合,需要有引发剂产生自由基将反应引发。过硫酸铵(AP)就是引发剂,而TEMED(四甲基乙二胺)可以催化过硫酸铵产生自由基,催化聚丙烯酰胺单体聚合成网状结构。但是两者的量一定适宜,否则会有烧胶或带变形的可能。 加入一层水:在注入分离胶后上面需要加入一层水,这是因为空气中的氧分子会氧化AP使其活性减弱。加入这层水后可以让反应快速进行,同时也保证了分离胶上层面的平整。 加样 𐟒犥𐏥🃦‹”出梳子,将制好的凝胶及玻璃板放入电泳槽内并组装好。将电泳缓冲液加入内外槽,使凝胶的上下两端均能浸泡在电泳缓冲液中。将待测蛋白样品与上样缓冲液按比例混合,沸水中加热3-5分钟使蛋白充分变性。将样品加入到凝胶孔中,同时必须在同一片胶的孔中加入蛋白marker作为参照。加样时间要尽量短,以免样品扩散。 电泳 𐟔‹ 当样品上样并接通两极间电流后(电泳槽的上方为负极,下方为正极),在凝胶中形成移动界面并带动凝胶中所含SDS负电荷的多肽复合物向正极推进。电泳时通常上层浓缩胶时采用低电压(80-100V)恒压电泳,而在溴酚蓝进入下层分离胶时采用高电压(120V)恒压电泳。溴酚蓝染料前沿下至凝胶末端时停止电泳。电泳完毕的胶完整地放在盛有电泳液的玻璃皿中,将目的蛋白所在区域切下来。 持续更新,敬请关注~

2023年WB实验全攻略:从原理到操作 𐟔젥ꌥŽŸ理 这个实验用到了聚丙烯酰胺凝胶电泳技术,主要是把细胞或组织里的蛋白质分离出来,然后转移到PVDF或者NC膜上。接着,用特定的抗体去和目标蛋白结合,再用辣根过氧化物酶(HRP)标记的第二抗体进行反应。最后,通过底物显色来分析曝光条带的位置和灰度,从而知道目标蛋白在样本中的表达情况。 𐟓 实验流程 样本制备:包括蛋白质提取、定量和变性。 SDS-PAGE凝胶电泳:把蛋白质分离。 转膜:通过电转把蛋白质转移到PVDF、硝酸纤维素膜或者尼龙膜上。 封闭:用脱脂牛奶或者BSA封闭膜上的非特异性位点。 一抗、二抗孵育:让抗体和蛋白质结合。 ECL化学发光检测:显影。 胶片灰度分析及数据处理:用内参进行半定量分析。 𐟧ꠦ 𗦜쥈𖥤‡(贴壁细胞总蛋白提取) 用TBS(Tris缓冲液)冲洗细胞三次,最后一次吸干残留液。 加入适当体积的细胞总蛋白提取试剂(使用前加入蛋白酶抑制剂PMSF或cocktail),在培养板内3-5分钟。 反复晃动培养板,使试剂与细胞充分接触。 用细胞刮刀将细胞及试剂刮下,收集到1.5ml离心管中。 冰浴30分钟,期间用移液器反复吹打,确保细胞完全裂解。 12000g离心5分钟,收集上清,即为总蛋白溶液。 样品分装冻存于-20℃备用。 𐟓Œ 注意事项及原理 为什么用TBS而不是PBS?PBS是磷酸盐缓冲液,虽然用途广泛,但容易与钙离子镁离子络合形成沉淀,还会抑制某些生物化学过程。而Tris缓冲液对生物化学过程影响很小,且不与钙离子镁离子发生作用。 希望这篇攻略能帮到你,祝你实验顺利!𐟒ꀀ

WB实验流程及注意事项详解 𐟧Š 样品制备与保存 在样品制备完成后,应立即将其低温保存。短期(几天)内可存放在-20℃,长期则建议使用-80℃。需要注意的是,对于IP(免疫沉淀)实验,样品应直接进行IP操作,以避免冻融破坏蛋白质间的相互作用。 𐟔⠦ 𗥓定量 在样品制备过程中,定量是一个关键步骤。由于WB系统本身存在约20%的误差,因此细微的差别通常可以忽略不计。细胞样品可以先进行计数再接种,短时间内即使细胞生长有差异也不会对WB结果产生太大影响。组织样品则需要从肿瘤组织的大小(称重)开始,精确控制裂解液的体积,并尽量避免蛋白损失。 𐟧ꠥ‡胶电泳 SDS-PAGE(十二烷基硫酸钠-聚丙烯酰胺凝胶电泳) 基本原理:凝胶由两种不同的凝胶层组成,上层为浓缩胶,下层为分离胶。浓缩胶为大孔胶,缓冲液pH6.8,分离胶为小孔胶,缓冲液pH8.8。 小贴士: 制胶过程中,确保胶面平整,凝胶速度不宜过快。 点样顺序需提前设计,空的泳道需点上等体积的1X loading buffer。 电泳时通常采用恒压电泳,具体电压根据仪器不同略有差异,但不宜过高。 𐟓Š 电泳条件 样品间浓度差异过大、盐浓度过高、太过粘稠、有不溶的颗粒物、胶孔不齐等都会影响条带的美观。 根据蛋白分子量大小选择不同浓度的分离胶,例如8%胶适用于300KDa-36KDa之间的蛋白,12%胶适用于180KDa左右的蛋白。 𐟔„ 转膜与检测 转膜效率对WB结果的影响不容忽视。对于大蛋白转印,很多书籍建议采用低浓度胶,如6%SDS-PAGE。但实际操作发现,6%胶太软,制作转印三明治的操作非常麻烦,且内参如Actin、tubulin都在45KDa附近,而6%胶底边溴酚蓝指示55KDa左右,除非采用灌注不同浓度的胶或梯度胶,否则需要同时跑两块胶。因此,300KDa以下8%胶(底边36KDa)都可以胜任,可以适当调整选择7-8%胶同时兼顾内参和大蛋白。 通过以上步骤,可以确保WB实验的顺利进行,并获得准确可靠的结果。

WB封闭全攻略:原理、步骤和注意事项 大家好!今天我们来聊聊Western Blot(WB)实验中的封闭步骤,带你彻底搞懂这个基础实验环节。记得点赞关注,不迷路哦~ 封闭原理 𐟧슧‰駐†屏障: 封闭剂通过物理作用覆盖膜上的未占据位点,形成一个屏障,阻止抗体与膜直接结合。这样,抗体就只能与目标蛋白结合了,减少非特异性结合,降低背景信号。 电荷和亲水性: 封闭剂的分子具有适当的电荷和亲水性,能够与膜表面相互作用,进一步增强封闭效果。这种电荷和亲水性帮助封闭剂在膜表面稳定地吸附。 封闭目的 𐟎‡少非特异性结合: 在WB实验中,膜表面(如PVDF或NC膜)可能会有未被蛋白质占据的结合位点。这些位点如果不被封闭,就可能与一抗或二抗非特异性结合,从而导致背景信号增加。 提高信噪比: 封闭过程可以有效降低非特异性信号,提高目标蛋白的可检测性,使实验结果更加清晰。信号与背景的比值(信噪比)是衡量实验成功与否的一个重要指标。 保护膜表面: 封闭剂可以覆盖膜表面,防止其他蛋白质或化学物质干扰信号。这对于在复杂生物样品中检测特定目标蛋白尤为重要。 封闭步骤及注意事项 𐟓 膜处理: 在转膜后,将PVDF或NC膜放入含有封闭剂的缓冲液中。封闭剂的浓度通常为5%至10%(如5%脱脂奶粉或BSA)。 孵育: 在室温下孵育1小时,或者在4Ⰳ下过夜。这一过程使封闭剂充分覆盖膜表面,确保未被占据的结合位点得到封闭。 注意事项: 封闭时间过短可能导致非特异性结合,封闭时间过长则可能降低信号强度。一般建议封闭时间为1小时至过夜。室温封闭适用于大多数实验,但在某些高灵敏度实验中,选择4Ⰳ孵育可能会获得更好的封闭效果。 洗涤: 孵育结束后,用TBST(含有Tween-20的Tris缓冲盐水)洗涤膜,通常洗涤3次,每次5-10分钟,以去除未结合的封闭剂。洗涤步骤有助于减少背景信号。注意不要过于频繁洗涤,以免目标蛋白流失。 加入抗体: 洗涤后,直接加入一抗(通常是针对目标蛋白的特异性抗体),继续进行WB的下一步。 希望这篇攻略能帮到你,让你的WB实验更加顺利!如果有任何问题,欢迎在评论区留言哦~

WB实验中蛋白煮沸的四大原因 在进行WB(Western Blot)实验时,每次上样前都需要将蛋白样品进行煮沸处理。这个步骤看似简单,但实际上却对实验结果有着至关重要的影响。那么,为什么每次上样都需要煮蛋白呢?让我们一起来探讨一下其中的原理吧! 促进 SDS 与蛋白质的结合 𐟒ꊓDS(十二烷基硫酸钠)是一种阴离子去污剂,它能与蛋白质结合,使其完全变性和解聚,形成带负电荷的棒状结构。这种结构在电场中能够稳定迁移,是电泳分离的基础。然而,SDS 与蛋白质的结合并非自发进行,需要一定的条件来加速这个过程。高温处理(如煮沸)能够显著提高 SDS 与蛋白质的结合效率,确保蛋白质完全变性和解聚,便于后续蛋白质分子量大小的分离。 破坏蛋白质的高级结构 𐟏—️ 蛋白质的高级结构(包括二级、三级和四级结构)是由多种非共价键(如氢键、疏水键、离子键等)维持的。这些高级结构在电泳过程中可能会干扰蛋白质的迁移,导致实验结果不准确。煮沸处理能够破坏这些非共价键,使蛋白质的高级结构解体,转变为线性结构。这样,蛋白质在电泳时的迁移率与分子量大小有关。 灭活蛋白酶 𐟔动›‹白酶是一类能够水解蛋白质的酶类,它们的存在严重干扰 WB 实验结果。在样品制备和处理过程中,如果未能有效灭活蛋白酶,它们可能会降解蛋白质,导致实验结果出现偏差。煮沸处理是一种有效的灭活蛋白酶的方法,能够确保蛋白质在电泳过程中保持完整,不被降解。 提高蛋白样品的稳定性 ⚖️ 煮沸处理不仅能够促进 SDS 与蛋白质的结合、破坏蛋白质的高级结构、灭活蛋白酶,还能够提高蛋白样品的稳定性。确保实验结果的可能性和重复性,每次上样前对蛋白样品进行煮沸处理,能够确保实验条件一致性,从而提高实验结果的可靠性和重复性。如果省略这一步骤,不同批次或不同实验者之间的实验结果可能出现较大差异。 煮蛋白的具体操作步骤 𐟍𓊧…‹白的过程通常是将蛋白样品与上样缓冲液混合后,在沸水浴或PCR仪中加热至95-100Ⰳ,煮3-5分钟。加热过程中需要不断摇动或搅拌样品,以确保受热均匀。除个别蛋白样品外,如膜蛋白不宜高温,一般37℃放置10分钟,而核蛋白先配平后,不需要进行煮沸,直接离心上样。煮蛋白时间不宜过长,不然可能会导致蛋白变性,影响后续实验结果;煮蛋白温度控制在95-100Ⰳ之间为宜,常规煮蛋白时间为3-5分钟,如果样品浓度过浓时就煮10分钟。煮蛋白10分钟后,仍然吸不出来,适当增加 Buffer,继续煮,也可以对样品进行超声。若煮样的时间过长,蛋白出现凝固,建议丢了吧,没用了;煮蛋白过程中要记得混匀样本,确保样本受热均匀。 通过以上几点,我们可以看出,煮蛋白在WB实验中扮演着至关重要的角色,确保了实验的准确性和可靠性。希望这篇文章能帮助你更好地理解WB实验中煮蛋白的必要性!

国自然研究方案关键技术全解析 𐟍š 米饭再美味,没有米也是白搭。同样,科研工作再精彩,没有合适的实验技术也是枉然。 𐟔 在撰写研究方案时,深入理解并掌握关键实验技术至关重要。这不仅能帮助你更好地把控研究方案,还能提升你的设计能力,让你在科研的舞台上游刃有余。 𐟌쯸 例如,你知道WB(Western Blot)实验的真正目的吗?它不仅仅是检测蛋白表达水平,还能定量计算蛋白丰度。那么,为什么还需要ELISA技术呢?因为它们各有千秋,相互补充。 𐟔砦Š€术之间是相互依赖的,没有一种技术可以完全替代另一种。因此,理解这些技术的原理、特点和实验目的,以及可能的实验结论,是创新和优化研究方案的关键。 𐟓 以下是国自然研究方案中常见的一些关键实验技术总结: 检测RNA分子的空间分布和表达丰度:活细胞动态RNA成像技术、单分子RNA FISH原位杂交、多分子RNA Scope原位杂交技术、细胞核-细胞质分离结合qPCR、单细胞测序技术、空间转录组技术、Northern blot、dot blot等。 检测蛋白分子的空间分布和表达丰度:免疫荧光、免疫组化、细胞核-细胞质分离结合WB、GFP标签融合蛋白示踪技术、空间蛋白质组学等。 检测DNA拷贝数和突变:FISH原位杂交、qPCR、基因组测序等。 检测蛋白分子总的表达量(不含空间信息):ELISA技术(定量)、Western Blot技术(半定量,不准确)。 检测蛋白分子的分子量大小(不含空间信息):分子筛层析法、Western Blot技术、双向2D电泳、质谱分析等。 检测蛋白分子的高级结构信息:蛋白结晶后冷冻电镜解析高级结构、分子对接分析等。 分子表达干预技术:分子克隆操纵表达技术、病毒载体过表达或者敲减表达(shRNA、siRNA)、点突变技术、CRISPR敲除或者敲入技术、CRISPRi沉默技术、功能区分段(truncate)敲除技术、靶蛋白小分子抑制剂或者单抗抑制剂等。 体内水平探索分子功能:类器官、PDX模型、裸鼠皮下成瘤、各种疾病动物模型、活体成像技术等。 细胞功能探索:细胞增殖、细胞周期检测、细胞衰老、细胞干性、细胞分化、细胞凋亡、细胞焦亡、炎症风暴、迁移、侵袭能力,表面受体表达等。 𐟚€ 在选择关键技术时,务必量力而行,确保符合你所在实验室的硬件设施和技术水平。避免为了追求新颖而脱离实际,评审专家会对此提出质疑。 𐟌Ÿ 掌握这些关键技术,你的研究方案将更加全面和深入,为科研工作的成功打下坚实基础。

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