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单细胞转录组测序新上映_单细胞转录组测序技术原理及其应用(2024年12月抢先看)

内容来源:卡姆驱动平台所属栏目:导读更新日期:2024-12-04

单细胞转录组测序

单细胞测序:谁更强? 单细胞测序是一种基于二代测序(NGS)的方法,用于检测群体中单细胞的基因组、转录组、表观基因组和蛋白组,从而提供高分辨率的细胞间差异视图。其中,单细胞转录组测序(Single-cell RNA-Sequencing,ScRNA-Seq)最为常见。 Smart-seq和10x Genomics是两种重要的单细胞测序技术。Smart-seq采用全转录组扩增方法,利用oligo-dT引物和模板置换技术扩增cDNA全长。而10x Genomics则只能获得3'端转录本信息,非全长扩增。 C1 /Smart平台(Fluidigm)是最早应用于单细胞领域的商业化分选技术之一,于2013年推出。该平台通过微流体(FACS)实现96个细胞的自动分离、cDNA合成和基于Smart-seq的扩增。而Chromium(10x Genomics)平台以及其他平台如ddSEQ(Bio-Rad/Illumina)、Nadia(Dolomite)和inDrop(1CellBio)则基于微流控系统(Droplet),将单细胞技术的通量提高到了10000-100000个细胞的量级。 10x Genomics和Drop-seq的测序原理相似,都是通过将细胞封装在微小液滴中进行平行分析来分析数千个单个细胞中的mRNA表达。Drop-seq的具体步骤包括: 从组织中制备单细胞悬液 将每个细胞与一个带有barcoded微粒(bead)共封装在纳升级液滴中 在液滴中分离细胞并裂解 捕获细胞的mRNA在伴随微粒上形成STAMP(附着在微粒上的单细胞转录组) 在一次反应中反向转录、扩增和测序数千个STAMP 使用STAMP条形码推断每个转录本的来源细胞 Barcode的合成方法是将细胞分为四群,分别标记A、G、C、T四个不同碱基。然后汇合所有细胞重新分为不同的四群,标记AGCT。重复上述步骤12轮,理论上可标记16777216个细胞。

单细胞测序:从基础到实践 单细胞转录组测序(scRNA-seq)是近年来发展迅速的生物学技术,能够精确反映细胞间的异质性。它在肿瘤免疫、胚胎发育和细胞分化等领域具有广泛的应用前景。以下是单细胞测序的主要流程: 组织解离 𐟧스𛥥𐏩𜠥🃨„为例,组织解离的过程如下: 处死小鼠并固定,开胸暴露心脏。 用预冷的PBS溶液灌流心脏,清洗外周血,尽量去除结缔组织。 将小鼠心脏放入1ml的组织保护液中,用冰袋寄送至实验室。 将心脏放入配置好的消化酶溶液中,用剪刀和镊子剪碎组织,放入水浴锅内恒温孵育消化。不同的组织需要不同的酶,解离时间根据具体样本调整。 消化完成后,取细胞悬液进行荧光计数观察,根据细胞状态进行去死细胞和去碎片处理。处理完成后重新离心重悬细胞悬液,计算需要上机的细胞数量。 核酸提取、扩增和文库构建 𐟧ꊤ𘎤𜠧𛟦𗷥ˆ细胞测序不同,单细胞测序起始样本中核酸含量极低,需要对筛选出的细胞进行扩增。主要方法有单细胞全基因组扩增和单细胞全转录组扩增。 测序和数据分析 𐟓Š 制备好文库后,进行关键的测序步骤。所有Illumina测序平台均采用边合成边测序(SBS)技术,全球90%以上的测序数据都是基于该技术产生的。Illumina测序系统单次运行可以输出的数据范围从30万碱基到数万亿碱基,取决于仪器类型和配置。 通过以上步骤,单细胞测序能够精准反映细胞间的异质性,为肿瘤免疫、胚胎发育和细胞分化等领域的研究提供重要数据支持。

综述第一章“Single-cell transcriptome sequencing”,详细介绍了单细胞转录组技术的发展历程、当前可用的scRNA-seq技术及数据分析方法,并概述了单细胞转录组测序技术在胚胎发育、组织和器官发展研究、肿瘤生物学、免疫系统研究以及传染病研究等领域的应用。 综述第二章“Single-cell whole-genome sequencing”,总结了经典的单细胞全基因组扩增技术(scWGA)及高通量单细胞全基因组测序技术(scWGS),scWGS技术通过放大单个细胞中的微量DNA,为研究细胞间的遗传异质性提供了新的视角。 综述第三章“Single-cell epigenome sequencing”,聚焦单细胞表观基因组测序技术,这些技术能够揭示细胞异质性的转录机制,包括DNA甲基化、染色质状态、核小体定位、组蛋白修饰和转录因子结合等表观遗传特征。 综述第四章“Single-cell proteomics technology based on mass spectrometry”介绍了基于质谱的单细胞蛋白质组学技术。 综述第五章“Single-cell metabolomics technology”详述了基于质谱的单细胞代谢组学技术(SCM),并重点讨论了基于质谱的SCM采样技术与数据分析。 综述第六章“Single-cell multimodal sequencing technology”首先回顾了单细胞联合分析技术的工作流程及最新进展,接着重点详述了以转录组为中心的多模态技术,如转录组联合基因组、转录组联合表观组以及转录组联合蛋白质组,此外还介绍了捕获两个组学以上的多模态技术。 综述第七章“Single-cell spatial transcriptomics technology”聚焦单细胞空间转录组学技术的最新进展。这些技术通过保留空间信息的同时检测基因表达,克服了传统单细胞测序技术丢失关键空间信息的局限。 综述第八章“Single-cell CRISPR screening technology”分别介绍了基于转录组、表观基因组和多模态的单细胞CRISPR筛选技术(scCRISPR-seq),该技术结合了CRISPR干扰和单细胞测序,用于在大规模单细胞分辨率下进行基因组编辑和功能筛选。 最后,研究团队对单细胞组学技术的未来发展进行了展望。

单细胞转录组测序技术全景解析 ### 发展历程 𐟕𐯸 早期探索 1992年:Eberwine等人首次使用体内逆转录(RT)和体外转录扩增(IVT)技术进行单细胞基因表达分析。 1990年代末至2000年代初:简化PCR方法,引入多重PCR,增加检测的细胞和基因数量。 全转录组研究 2009年:Tang等结合单细胞RNA扩增技术和高通量DNA测序,实现无偏的单细胞转录组研究。 高通量时代 2011年:Islam等开发STRT-seq,使用96孔板进行多重单细胞RNA-seq。 2015年:Klein和Macosko等引入Drop-seq和inDrop技术,利用液滴标记进行高通量单细胞RNA测序。 规模化发展 通过纳米液滴、微孔板和UMI技术,检测规模扩大至数百万个细胞。 两大挑战 𐟏ž️ 核酸扩增 将单细胞微量mRNA扩增至可检测量级,避免PCR扩增过程中引入偏差。 高效获得mRNA文库 选择性扩增mRNA,避免rRNA污染,确保高质量的转录组数据。 主要平台 𐟛 ️ CEL-seq/C1:基于IVT反转录和PCR扩增。 Drop-seq:微流控液滴技术。 MARS-seq:多重液滴技术。 SCRB-seq:使用UMI进行转录组捕获。 Smart-seq/C1和Smart-seq2:全长转录组覆盖,适用于高灵敏度检测。 Smart-seq 𐟔슓mart-seq TSO引物:增加cDNA 5'端的延伸能力。 锁核酸(LNA)和高浓度Mg2+提高逆转录效率和产量。 Smart-seq2 TSO引物与LNA:提高稳定性。 甜菜碱和高温处理:解开RNA二级结构,提高逆转录效率。 效果:低含量基因覆盖率60%,高含量基因90%。 Smart-seq3 5' UMI RNA计数:每个cDNA带有唯一UMI,减少PCR扩增偏差。 改进逆转录酶和反应条件:提高效率和产量,确保高质量cDNA。 优势:全长转录覆盖、高分辨率分子重建。 Smart-seq3xpress 高细胞通量:通过减少反应体积和成本,提高处理效率。 优化反应条件:确保高质量测序数据,降低成本。 液滴型单细胞测序技术 𐟒犦Š€术简介 Drop-seq:使用微流控技术将单个细胞隔离在液滴中,对mRNA进行条形码标记并测序。 inDrop:类似于Drop-seq,但使用水凝胶珠和紫外线诱导释放条形码引物。 10X Genomics:使用凝胶珠乳液(GEMs)进行高通量单细胞RNA测序。 关键区别 细胞条形码容量:inDrop具有额外的寡核苷酸连接能力。 水凝胶珠:在inDrop和10X中使用,提高了稳定性和捕获效率。 PCR和测序策略:不同方法以确保数据捕获的准确性。

单细胞与空间转录组学揭示细胞通讯新模式 在《Nature Methods》杂志上,有一篇题为《通过单细胞和空间转录组学推断驱动模式的细胞间流动》的文章,真是让人眼前一亮。这篇文章提出了一种全新的方法来研究细胞通讯,让我对细胞通讯的复杂性有了更深的理解。 传统上,我们进行细胞通讯分析时,可能只关注单个基因的变化。但这篇文章告诉我们,当细胞受体接收到信号刺激时,实际上是一个由多个基因构成的基因模块在发生变化。这个模块可能包含我们感兴趣的下游分子或转录因子,甚至可能与某些临床表型(如预后或疗效)有关。 文章中提到的FlowSig算法,完美地解决了这些问题。无论是单细胞转录组测序还是空间组学,都能从中推断出细胞间通信驱动的细胞间流动。这种方法揭示了细胞间信息流动的复杂性,为多种疾病的研究提供了新的视角。 具体来说,文章中提到的FGF受体(FGFR1和FGFR3)是输入信号的来源,而GEM模块则是这些信号引起的细胞内变化。这些变化会促使细胞释放一系列配体。以前的研究中并没有包含GEM这个中间过程。 总的来说,这篇文章为我们提供了一个全新的研究细胞通讯的框架,让我们能够更深入地理解细胞间的复杂相互作用。

单细胞测序与转录组测序联合分析新思路 最近在生物信息学界,单细胞测序(scRNA-seq)和转录组测序的联合分析引起了不少关注。你是否有过这样的疑问:如果再加上一个scRNA-seq,会不会让研究变得更加独特和深入?𐟤” 让我们来看看一篇发表在《Frontiers in Immunology》上的文章吧。这篇文章的影响因子高达4.7160,主要探讨了转录组和方向基因集的分析。根据这篇文献的思路,我们可以替换基因集在不同疾病中进行研究,从而得到不同的关键细胞簇进行分析。 以急性淋巴细胞白血病(ALL)为例,这种疾病与淋巴细胞分化和来源的异常有关。ALL主要由B淋巴细胞和T细胞组成,其中T淋巴细胞在小儿ALL中的比例为85%,对B-ALL患者的肿瘤复发有重要影响。这篇文章基于NAD+代谢相关基因,研究了NAD+代谢在B-ALL的早期诊断和复发中的作用,为B-ALL的早期生物学指标和深入研究NAD+代谢的机制奠定了基础。 如果你也想进行类似的分析,不妨参考一下这篇文献。更多生物信息学的热点思路将持续更新,记得点赞、收藏和关注哦!𐟓š✨

𐟎“ 金唯智单细胞转录组培训课程全攻略 𐟔슰ŸŒŸ 想要从零开始学习单细胞转录组技术?金唯智生物科技有限公司为你提供了一站式培训服务! 𐟓… 课程日期:7月12日至7月14日 𐟕˜ 课程时间:每天9:00-17:00 𐟑袀𐟏련ᄃ若†…容: 7月12日: 9:00-9:40 单细胞转录组测序理论及应用 9:50-10:30 10x单细胞转录组测序实验经验分享 10:40-11:30 10x单细胞转录组结题报告解读 13:00-15:00 Linux操作系统与常用命令实践 15:30-17:00 R语言基础与命令实践 7月13日: 9:00-9:40 10x Cellanger软件介绍 9:50-11:30 Seurat软件分析流程 13:00-13:50 细胞亚型注释方法介绍 14:20-17:00 Seurat及 SingleR实践及常见图片绘制 7月14日: 9:00-10:30 基因功能富集分析 10:40-11:30 基因数据库注释 13:00-15:00 拟时序分析:Monocle2原理、应用及实践 15:20-16:30 细胞通讯:CellphoneDB原理、应用及实践 𐟒ᠧ‰𙥈멀‚合生信小白,从零开始学习Linux系统、R语言基础,掌握新技能!𐟚€

近年来,单细胞转录组测序技术揭示了肝星状细胞(HSC)具有高度的异质性,提示不同的HSC亚群具有独特的基因表达特征和功能。在「2024年美国肝病研究学会」(AASLD)年会上,首都医科大学附属北京友谊医院尤红教授、杨爱婷副教授团队的一项研究揭示了ECM1高表达HSC亚群在肝纤维化消退中的关键作用,并荣获“大会优秀壁报”殊荣。这一发现不仅深化了我们对肝纤维化发病机制的理解,也为开发新型抗纤维化药物指明了方向。「 国际肝病」

ggplot2绘制KEGG富集 在之前的分享中,我们已经深入探讨了KEGG富集分析的方法。今天,我们将使用tidyverse和ggplot2来进一步美化这些分析结果。通过KEGG的category分类,我们将绘制柱形图,并将x轴转换为-log10p值,以增强可视化的效果。𐟓Š 𐟎蠩š𞧂𙥜褺Žy轴注释的添加,以及配色和文字风格的调整。尽管如此,这些步骤与之前分享的可视化方法相似。 𐟔 我们的目标是创建一个既美观又富有洞察力的可视化作品,帮助研究人员更好地理解数据。 𐟓š 无论是单细胞测序分析,还是转录组测序,甚至是KEGG和GO功能富集分析,我们都能通过ggplot2绘制出精美的图形。 𐟖𜯸 让我们一起探索如何使用ggplot2,将KEGG富集分析的结果以一种新的方式呈现出来吧!

𐟔 生信分析达人,专业服务 𐟌Ÿ 生信分析与画图,专业服务 包括TCGA,GEO数据挖掘,芯片数据分析,bulk-RNA测序,单细胞转录组下游分析,具体如下: 【分析】 数据整合与表达矩阵处理 使用DEseq2, EsgeR, Limma进行差异分析 GSEA,GO,KEGG富集分析 Cibersort,Estimate免疫浸润分析 单细胞数据处理,降维聚类,tsne umap可视化,细胞注释 单细胞差异分析,GSEA富集分析 Motif转录因子富集分析 AUcell分析 Scenic调控网络分析 monocle拟时序分析 细胞互作与通讯 InferCNV 【画图】 生存曲线,火山图,热图,小提琴图,棘状图,柱状图,气泡图,维度图,GSEA曲线图,散点图,箱线图,时间轨迹图,tsne umap降维图,PCA图,峰峦图,圈图,和弦图,溪流图

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