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如何洗涤移液管在线播放_洗涤试管的正确方法(2024年12月免费观看)

内容来源：卡姆驱动平台所属栏目：导读更新日期：2024-12-02

如何洗涤移液管

校招面试必备：实验操作与仪器原理问答在校招面试中，毕业生们常常会遇到一些关于实验操作和仪器原理的理论问题。以下是一些常见的面试问题及其答案，希望能对正在准备校招的同学有所帮助。 𐟧𜠥悤𝕦𘅦𔗧Ž𛧒ƒ器具最干净？答案：清洗玻璃器具时，应先使用洗涤剂和清水彻底清洗，然后用蒸馏水冲洗干净，最后烘干。 𐟔砧绦𖲦“作注意事项答案：在进行移液操作时，应使用计量过的移液管而不是移液枪，以确保移液量的准确性。 𐟔젤𛪥™襎Ÿ理答案：了解各种实验仪器的原理，例如离心机、分光光度计等，能够更好地理解和操作这些设备。 𐟧ꠥꌥ𘸨答案：掌握基本的实验常识，如实验步骤、注意事项和安全措施，以确保实验的顺利进行。这些问题不仅考察了毕业生的理论知识，还考验了他们的实际操作能力和问题解决能力。希望这些信息能帮助你在面试中更好地展现自己的实力。

实验室必备技能：移液枪使用详解 𐟧ꠥꌥŸ𚧡€操作：移液管、移液枪、微型注射器、顶空瓶压盖器等。 𐟓Œ 移液枪使用技巧移液枪有两个档位：慢慢压按钮时，第一次感到阻力突然增大是第一档；在第一档基础上继续按按钮，直到一按到底的地方是二档。吸取液体时使用一档；排除液体时，为了将枪头中的液体全部排出，需要排更多的空气，因此排液时打到二档。 𐟓Œ 移液管使用步骤反复清洗三次后，吸取溶液至刻度以上，立即用右手食指按住管口。移液管提出液面后，用滤纸擦掉沾在外壁的液体。直立移液管，管下端紧靠锥形瓶内壁，稍松开食指，让溶液沿瓶壁慢慢流下。全部溶液流完后需等15秒再拿出移液管，以便使附着在管壁的部分溶液得以流出。 𐟓Œ 微量注射器使用注意事项取液体样品时，先用少量试样洗涤几次或将针头插入试样反复抽排几次，并要稍微多于需要量。如有气泡，将针头向上，排除气泡和过量的样品，用无棉的纤维纸吸去针头的试样。注意切勿使针头内的样品流失。 𐟓Œ 今日自学知识量入式（in-quantity style）：是指量入的体积准确，量器的一种分类。量入式仪器包括容量瓶、烧杯、量入式量筒。量出式（ex-quantity style）：是量器的一种分类。量出式量器以移液管和滴定管为代表，通过液体向量器外转移来测定体积。

玻璃干燥皿 𐟧ꠥꌤ𛪥™褸Ž试剂仪器耗材：各种玻璃器皿：16支试管/组、2个250mL三角瓶/组、8个培养皿/组、6个移液管/组电热干燥箱棉花、纱布、棉线锥形瓶封口膜、橡皮筋试管刷、锥形瓶刷等试剂：清洗工具和去污粉肥皂、洗涤液、洗手液等 𐟧𜠥ꌦ�ꤊ洗涤：用试管刷蘸取少量去污粉，反复刷洗器皿2-3次，清洗掉标签等杂物。用自来水冲洗2-3次。用少量去离子水荡洗1-2次，烘干水分。包扎：培养皿：洗净的培养皿烘干后每8-10套叠在一起，用牢固的纸卷成一筒，或装入特制的铁桶中，然后进行灭菌。吸管：洗净烘干后的吸管，在吸口的一头塞入少许脱脂棉花，以防在使用时造成污染。塞入的棉花量要适宜，多余的棉花可用酒精灯火焰烧掉。每只吸管用一条宽约4-5厘米的纸条，以30-50度的角度螺旋形卷起来，吸管的尖端在头部，另一端用剩余的纸条打成一结，以防散开，标上容量，若干支吸管包扎成一束进行灭菌，使用时从吸管中拧断纸条，抽出吸管。试管和三角瓶：试管和三角瓶需要做合格的棉塞，棉塞可起过滤作用，避免空气中微生物进入容器。制作棉塞时要求棉花紧贴玻璃壁，没有皱纹和缝隙，松紧适宜。过紧易挤碎管口和不易塞入；过松易掉落和污染。棉塞的长度不少于管口直径的两倍，约2/3塞进管口。若干支试管用报纸包扎后用绳扎在一起，在棉花部分外包裹油纸或牛皮纸，再用绳扎紧。三角瓶加棉塞后单个用报纸或牛皮纸包扎。干热灭菌（电热干燥箱的使用）：把要灭菌的物品放在干燥箱内，堆积时要留有空隙，勿使接触器壁，铁壳，关闭箱门。接通电源，把箱顶的通气口适当打开，使箱内湿空气能逸出，至箱内温度达到100℃时关闭。调节温度控制器旋钮，直至箱内温度达到所需温度为止，观察温度是否恒定，若温度不够再行调节，调节完毕后不可再拨动调节旋钮和通气口，保持140-160℃2-3小时。切断电源，冷却到60℃时才能把箱门打开，取出灭菌物品。 𐟓 实验报告记录各种不同物品所用的灭菌方法及灭菌条件（温度、压力等)。制作棉塞的质量和数量。包扎培养皿、试管、移液管的质量和数量。

化妆品检测员必备技能：基础化验操作指南嘿，化妆品检测员们！今天我们来聊聊那些实验室里必须掌握的基础技能。无论是新手还是老手，这些小技巧都能帮你更高效地完成工作。让我们开始吧！滴定管的正确使用 𐟧ꊦ𓨥…妈–放出溶液后，记得等30秒到1分钟再读数哦。滴定管要垂直放在滴定台上读数，或者用两手指夹住上端垂直后读数。对于无色或浅色溶液，读弯月面下缘的实际最低点；有色溶液则让视线与液面两侧的最高点相切。初读和终读要用同一个标准。滴定管的保养 𐟒犧”襮Œ后，倒掉剩余溶液，用水洗净，装入蒸馏水至刻度以上，用大试管套在管口上。这样下次使用前就不必再用洗液清洗了。酸式滴定管长期不用时，活塞部分要垫上纸，否则塞子可能会打不开。碱式滴定管不用时，胶管要拔下，蘸些滑石粉保存。移液管和吸量管的清洗 𐟧𜊥…ˆ用自来水洗涤，再用蒸馏水洗净。如果内壁挂水珠，可以用铬酸洗液洗净。用洗液洗移液管或吸量管的方法 𐟧𔊥𓦉‹拿移液管或吸量管，管的下口插入洗液中，左手拿洗耳球，先将球内空气压出，然后把球的尖端接在移液管或吸量管的上口，慢慢松开左手手指，将洗液慢慢吸入管内直至上升到刻度以上部分，等待片刻后，将洗液放回原瓶中。用吸量管吸取溶液的方法 𐟧𚊥𓦉‹的拇指和中指捏住移液管或吸量管的上端，将管的下口插入欲取的溶液中，不要太浅或太深。太浅会产生吸空，把溶液吸到洗耳球内弄脏溶液；太深又会在管外沾附溶液过多。使用吸量管和滴定管的注意事项 𐟓 精密分析中使用的移液管和吸量管都不允许在烘箱中烘干。移液管与容量瓶常配合使用，因此使用前常作两者的相对体积的校准。为了减少测量误差，吸量管每次都应从最上面刻度为起始点，往下放出所需体积，而不是放出多少体积就吸取多少体积。容量瓶的试漏方法 𐟔犤𝿧”襉，应先检查容量瓶瓶塞是否密合。为此，可在瓶内装入自来水到标线附近，盖上塞子，用手按住塞子，倒立容量瓶，观察瓶口是否有水渗出。如果不漏，把瓶直立后，转动瓶塞约180ⰥŽ再倒立试一次。为使塞子不丢失不搞乱，常用塑料线绳将其拴在瓶颈上。希望这些小技巧能帮到你，让你的化妆品检测工作更加得心应手！如果有任何问题或需要更多指导，随时来找我哦！𐟘Š

滴定管、容量瓶和移液管使用全攻略 𐟧ꠦ𛴥š„使用练习清洗滴定管：用蒸馏水湿润滴定管，如果水不流下，说明未洗净，会影响吸液的浓度。检查滴定管是否漏水：用烧纸擦拭管壁和凹孔内的水，确保没有漏水现象。移液管的使用练习移液管的洗净：用自来水冲洗移液管，然后用蒸馏水洗涤，确保没有杂质。移液管的校准：将移液管放入容量瓶中，观察液面是否与刻线相切，如果不相切，需要进行校准。容量瓶的使用练习容量瓶的洗净：用自来水冲洗容量瓶，然后用蒸馏水洗涤，确保没有杂质。容量瓶的校准：将移液管放入容量瓶中，观察液面是否与刻线相切，如果不相切，需要进行校准。滴定管的注意事项气泡对滴定结果的影响：如果滴定管中有气泡，会影响滴定的准确性。可以通过快速打入空气的方法排出气泡。滴定管的正确使用方法：使用滴定管时，要确保玻璃珠在橡皮管内，这样可以防止气泡的产生。移液管的注意事项移液管的正确使用方法：使用移液管时，要确保液体从下口输入，这样可以避免气泡的产生。移液管的清洗和校准：使用后要及时清洗和校准移液管，确保下次使用时准确无误。实验数据记录与处理实验数据的记录：在实验过程中，要详细记录每个步骤和结果，以便后续分析。实验数据的处理：根据实验数据计算相关参数，并进行误差分析，得出准确的实验结果。实验结果与分析实验结果的讨论：根据实验数据讨论滴定管、容量瓶和移液管的使用方法和注意事项。实验建议：提出改进实验方法和提高实验准确性的建议。通过以上步骤，可以全面掌握滴定管、容量瓶和移液管的使用技巧，提高实验的准确性和可靠性。

𐟔젧𛆨ƒž培养全攻略：从基础到进阶 𐟌𑊧𛆨ƒž培养是实验室中的一项基础且至关重要的技术。对于科研人员来说，掌握细胞培养的技巧和细节至关重要。以下是一些关于细胞培养的基础步骤和实验小贴士，希望能帮助你在实验室中取得更好的成果。 𐟔 观察细胞状态：在传代之前，首先要观察细胞的密集程度和融合状态。通常，当细胞融合达到70-80%时，是传代的最佳时机。 𐟌€ 准备培养基：如果是贴壁生长的细胞：使用枪头或移液管吸去原培养液。用无菌PBS或无菌生理盐水洗涤细胞三次。加入适量的胰酶进行消化，时间根据细胞类型和消化需求而定。用枪头吹打细胞，次数视细胞类型而定。加入适量的完全培养基终止消化。 𐟒栥ˆ†瓶培养：将消化后的细胞溶液分瓶，如果是细胞株，可以直接均分到两个培养瓶中。如果是原代培养，可以根据消化时间对细胞进行分离。补足完全培养基至正常体积。 𐟔젨炥𛆨ƒž贴壁：传代后的细胞在2小时内会贴壁，根据细胞类型，贴壁后的形态会有所不同。 𐟓š 记录与保养：传代后，最好第二天进行细胞换液。实验结束后，收拾工作台，进行紫外照射消毒。通过这些步骤，你可以更好地掌握细胞培养的技巧，为你的科研实验打下坚实的基础。祝你实验顺利！

𐟧ꦺ𖦶𒩅制全攻略✨ 𐟔젥ꌥ‡Œ，溶液的配制是科研工作的重要一环。下面就来详细介绍一下溶液配制的步骤吧！ 1️⃣ 计算：首先，你需要根据实验需求计算出所需溶质的质量或液体浓溶液的体积。𐟧2️⃣ 称量：使用托盘天平精确称量固体溶质的质量，或用量筒、移液管准确量取液体体积。𐟓– 3️⃣ 溶解：在烧杯中溶解或稀释溶质，确保恢复到室温。若不能完全溶解，可适当加热。𐟔劊4️⃣ 转移：将烧杯内冷却后的溶液沿玻璃棒小心转入容量瓶中，注意玻璃棒下端应靠在容量瓶刻度线以下。𐟍𖊊5️⃣ 洗涤：用蒸馏水洗涤烧杯和玻璃棒2-3次，并将洗涤液转入容量瓶中，振荡以使溶液混合均匀。𐟒把6️⃣ 定容：向容量瓶中加水至刻度线以下1-2cm处，然后改用胶头滴管加水，使溶液凹面恰好与刻度线相切。𐟓 7️⃣ 摇匀：盖好瓶塞，反复上下颠倒容量瓶，使溶液混合均匀。𐟔„ 𐟒ᠥ𐏨𔴥㫯𜚥œ詅制过程中，要确保所有操作都准确无误，以减少相对误差。同时，要注意试剂水的纯度，避免带入杂质。 𐟔젥﹤𚎦 ‡准溶液的配制，有直接配制法和间接配制法两种方法。直接配制法是准确称取一定量的基准试剂，溶解后定量转入容量瓶中，加试剂水稀释至刻度；间接配制法则是将要配制的溶液先配制成近似于所需浓度的溶液，然后再用基准物或标准溶液标定出其准确浓度。𐟧ꊊ𐟓 在储存标准溶液时，要注意在常温下保存时间不得超过2个月，且浓度等于或低于0.02mol/L的标准溶液应于临用前用煮沸并冷却的水稀释制成，必要时重新标定浓度。𐟓…

化验员必备知识：14个关键问题解答嘿，化验员朋友们！𐟑‹ 你是不是也在为面试前的专业知识准备而头疼？别担心，我来帮你！这里有一份精心整理的化验员基础知识题库，涵盖了各种常见的面试问题，包括填空题、选择题、判断题和简答题。内容丰富，实用性强，绝对能帮你顺利通过面试！仪器洗涤的重要性 𐟧𜊤𛪥™覴—涤是否符合要求对化验工作的准确度和精密度都有影响。玻璃仪器洗净的标准是：仪器倒置时，水流出后不挂水珠。比色皿的使用技巧 𐟔슦‰𒧚🦘聾‰度分析最常用的仪器，要注意保护好透光面。拿取时手指应捏住毛玻璃面，不要接触透光面。光度测定前可用柔软的棉织物或纸吸去光窗面的液珠，将擦镜纸折叠为四层轻轻擦拭至透亮。玻璃仪器的干燥方法 𐟌ž 玻璃仪器的干燥有晾干、烘干和吹干三种方式。烘干温度一般在105～120℃，时长约1小时左右。电子天平的放置条件 ⚖️ 精度要求高的电子天平理想的放置条件是室温（20Ⱳ℃），相对湿度（45-60℃）。电子天平在安装后，称量之前必不可少的一个环节是校准。称量误差的类型 ⚖️ 称量误差分为系统误差、偶然误差和过失误差。系统误差存在于以下三个方面：方法误差、仪器和试剂误差、主观误差。物质的一般分析步骤 𐟧ꊧ‰騴觚„一般分析步骤通常包括采样、称样、试样分解、分析方法的选择、干扰杂质的分离、分析测定和结果计算等几个环节。采样误差的影响 𐟓‰ 采样误差常常大于分析误差，样品采集后应及时化验，保存时间愈短，分析时间愈可靠。试样制备的步骤 𐟏튥ˆ𖥤‡试样一般可分为破碎、过筛、混匀和缩分四个步骤。试样分解的方法 𐟔劥𘸧”觚„试样分解方法大致可分为溶解和熔融两种，溶解根据使用溶剂不同可分为酸溶法和碱溶法。微波的特性 𐟌 微波是一种高频率的电磁波，具有反射、穿透和吸收三种特性。重量分析的基本操作 𐟧‡量分析的基本操作包括溶解、沉淀、过滤、洗涤、干燥和灼烧等步骤。滤纸的选择 𐟧𛊦𛤧𚸥ˆ†为定性滤纸和定量滤纸，重量分析中常用定量滤纸进行过滤。滴定分析的仪器 𐟒犥œ覻𔥮š分析中，要用到三种能准确测量溶液体积的仪器，即滴定管、移液管和容量瓶。滴定的注意事项 𐟒‰ 滴定时应使滴定管尖嘴部分插入锥形瓶口或烧杯口下的1～2cm处，滴定速度不能太快，以每秒3～4滴为宜，切不可成液柱流下。希望这份题库能帮到你，祝你面试顺利！如果有任何问题，欢迎随时联系我哦！𐟘Š

𐟧ꧧ𛦶𒧮᧚„正确洗涤方法 𐟔你是否在实验室中遇到过移液管需要洗涤的情况？下面就来介绍一下移液管的洗涤方法吧！ 1️⃣ 首先，你需要准备一些必要的材料，如自来水、蒸馏水和待装液。当然，还有移液管本身。 2️⃣ 洗涤移液管时，一般采用“洗一般步骤：自来水冲洗→蒸馏水冲洗→待装液润洗”。这样既能去除管壁上的污垢，又能避免对实验结果造成影响。 𐟒ᧉ𙥈릏示：在洗涤过程中，要特别注意移液管上端要保持干燥，以避免液体残留影响实验结果。 3️⃣ 洗涤完成后，用纸擦干移液管外壁的液体，然后就可以准备进行下一步实验了。 𐟒ᥰ贴士：在使用移液管时，一定要检查是否有破损，以确保实验的顺利进行。通过以上步骤，相信你已经掌握了移液管的洗涤方法。记得在实验过程中保持细心和耐心哦！𐟧갟”쀀

人类基因组DNA提取全攻略𐟓– 𐟔젤𚺧𑻥Ÿ𚥛 组DNA提取实验简介：在人类基因组DNA提取实验中，我们使用细胞裂解液来裂解细胞膜，从而收集细胞核。接着，通过添加SDS破坏核膜，并使用蛋白酶K将核蛋白降解为小片段。然后，我们利用苯酚-氯仿提取来去除蛋白质，再用无水乙醇和75%乙醇洗涤DNA沉淀物。最后，真空干燥并溶解在TE中，以获得高分子量的DNA。 𐟧ꠦ‰€需试剂： 1.5ml Ep离心管蛋白酶K溶液 NaAc 1000ul蓝吸头 𐟓 实验步骤：细胞裂解和RNase /蛋白酶K消化将100微升抗凝全血放入1.5ml Ep离心管中，加入100微升裂解物和20微升RNaseA /蛋白酶K溶液，来回吸打混合，并在55Ⰳ孵育35分钟。将离心管倒置来回几次，直到溶液是水溶性的。加入10微升的3M NaAc（pH 4.8），然后加入1250微升的结合缓冲液，充分摇匀，以12,000 rpm离心30秒。 DNA与吸附柱结合用移液管转移上清液，并将其加入离心吸附柱（设置收集管）中，静置1分钟，以12,000 rpm离心30秒，然后将废液丢弃在收集管中。注意：每次需要将650微升的上清液转移至离心吸附柱，进行离心处理，将废液丢弃在收集管中。 DNA的纯化在离心吸附柱（设置收集管）中加入600微升洗涤缓冲液，以12,000 rpm离心30秒。重复步骤4一次，以12,000 rpm离心3分钟以完全除去洗涤缓冲液。小心取出离心吸附柱，弃去收集管，将离心吸附柱放入干净的1.5ml Ep离心管中，向离心吸附柱添加50微升分离缓冲液（洗脱缓冲液），静置1分钟，以12,000 rpm离心30秒。取出装有提取的基因组DNA的Eppendorf离心管。 DNA的琼脂糖凝胶电泳取8-10微升基因组DNA，加入2微升上样缓冲液，充分混合，将样品加入1%琼脂糖凝胶斑点中，然后进行电泳。通过以上步骤，我们能够成功提取人类基因组DNA，为后续的基因分析和研究打下基础。