银染最新娱乐体验_池吟银染《狐狸的陷阱》(2024年12月深度解析)
「容器」 玻璃瓶残片,出土于俄罗斯,不过是一件拜占庭器物,可能是在科林斯地区的工坊制作的,时代为公元11世纪到公元12世纪。
出一期池吟和银染,两个也是超甜的好吧[吃鲸][吃鲸]
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Pulldown-Mass和Pulldown-WB检测要点: (1)试验设计:尽量进行试验组别设计和生物学重复检测,提高后续验证的阳性率。常规过表达单组(对照组 vs 实验组),根据目的设计适当的生物学重复。如果后续以Pulldown-Mass数据进行互作组标准分析,则需要3-4组生物学重复;如果后续以寻找关键互作蛋白,进行深入的机制研究,则建议1-2次生物学重复。经验显示单次重复假阳性率达90%。 (2)细胞量:细胞用量要求不少于5E7(金标准:320g离心细胞量50,保障项目用量)。 (3)银染质控:Pulldown产物考染/银染质控。 (4)Pulldown送样建议:Pulldown后需用PBS清洗后,产物直接送样。不建议对蛋白进行洗脱处理送样,避免丢失互作蛋白信息。 (5)互作蛋白筛选和验证:数据分析以非标定量信号强度(LFQ intensity和FC>10)作为强阳筛选,以文献查阅,功能匹配,批量Pulldown-WB验证,提高验证成功率。理想Pulldown-MS结果的蛋白定量都到超过1000种蛋白。其中绝大部分蛋白为非特异结合或背景蛋白。以目的蛋白的富集信号强度和差异倍数作为参考(相对强信号和差异),分析实验组中明显定量较高且差异较大的蛋白,作为重要候选蛋白。同时对重要候选蛋白进行STRING互作分析、文献分析和目的蛋白功能匹配分析,选择更优的4-5个蛋白进行Pulldown-WB验证,提高Pulldown-WB成功率。 如有相关科研问题,欢迎留言探讨。 #科研#⠂ #研究生日常#⠂ #pulldown#⠂ #实验外包#⠂ #实验室日常#
PAGE染色优化,实验大不同! 自1959年Raymond和Weintraub首次使用聚丙烯酰胺作为电泳介质以来,聚丙烯酰胺凝胶已成为生化实验中最常用的支持介质。在蛋白质组学试验中,蛋白质经聚丙烯酰胺凝胶电泳后的染色是一个至关重要的环节。以下是一些优化PAGE染色的实验策略: 电泳条件优化 高温制胶可能会产生小气泡,因为高温下凝胶聚合反应瞬间完成,导致灌胶时气泡排除不及。而低温制胶则可能导致凝胶混浊且脆性增强。建议选择APS:TEMED配比1:10的条件,这样既能保证凝胶的质量,又能避免气泡的产生。 染色条件优化 芥襸𘨧银染显影体系中,AgNO3、CH2O和Na2CO3的使用量对显带效果有显著影响。通过试验发现,AgNO3使用量0.1%,CH2O使用量1mL,Na2CO3使用量0.2g,上样量1-2uL的体系效果最佳。 PAGE类型选择 PAGE分为变性聚丙烯酰胺凝胶(SDS-PAGE)和非变性聚丙烯凝胶电泳(native-PAGE)。SDS-PAGE添加了SDS和疏基乙醇变性剂,并在加热条件下将聚合蛋白质充分变性为亚基进行分离。而非变性电泳不含变性剂,多在低温条件下对天然构象的蛋白质进行分离。非变性电泳分离乳蛋白质的条带虽然较少,但对清蛋白的分离效果良好,更能明显区分乳清蛋白。 参考文献 The Improvement on the Method of Separating Leaf Proteins in Arabidopsis by SDS Polyacrylamide Gel Electrophoresis. Investigation of protein staining protocols of SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The study of the differences between cow and goat milk proteins by SDS-PAGE and native-PAGE. Research on Influence Factor of Non Denatured PAGE Technology of Chinese Cabbage. 通过这些优化策略,可以有效提高Western blot中PAGE染色的实验效果,确保数据的准确性和可靠性。
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#动态连更挑战# 漫画《狐狸的陷阱》银染和池吟。(注:银染是蓝毛,池吟是紫毛。银染是男主,池吟是女主。银染才是狐妖哦)
쐵ll Down实验结果解析 젥ꌧ来啦!让我们一步步解读Pull Down技术的实验结果吧! 1️⃣ WB预实验验证抗体质量 例如:图1展示了WB预实验的结果,可以看出抗体质量棒棒的,可以进行下一步的WB正式实验啦! 2️⃣ 银染结果揭秘 銤𞋥悯𞲦银染的神秘面纱,目的探针组有差异蛋白被拉出,这意味着我们可以进行后续的质谱分析,探索更多未知哦! 3️⃣ 质谱结果大放送 这一步将为我们提供更深入的信息,例如:图3展示了质谱分析的详细数据,帮助我们更准确地了解目的蛋白与候选蛋白的互作关系。 4️⃣ RPd-WB结果出炉 例如:图4展示了RPd-WB的结果,通过这一步我们可以进一步验证目的RNA和候选蛋白之间的互作,为研究提供更有力的证据! 参考文献: "LINC00941 promotes pancreatic cancer malignancy by interacting with ANXA2 and suppressing NEDD4L-mediated degradation of ANXA2." Cell death & disease 2022. ᥰ贴士:每一步的结果都是探索生物奥秘的重要一步,不要错过任何细节哦!
WB全流程6:转膜操作指南 1. 轻轻撬掉小玻璃板,注意动作要轻柔,避免胶体破裂。 2. ️ 切除加样孔、左右侧及下面多余部分,标记胶左上角,小心取下胶放入ddH2O盒子中,洗掉电泳液。 3. ✂️ 剪裁PVDF膜,确保其大小与胶体一致。 4. 堦🀦VDF膜:甲醇浸泡15秒,转膜液中浸泡3分钟。 5. 頧ㅨ绢三明治”: ① 硬质海绵充分浸泡电转液,挤出气泡; ② 转移支架底部为黑色,放置一块硬质海绵; ③ 放置三层滤纸,用玻璃棒滚压去除气泡; ④ 放置凝胶(翻面,切角右上角),靠近组装后的下方,用玻璃棒滚压去除气泡; ⑤ 放置PVDF膜(对应位置切角),用玻璃棒滚压去除气泡; ⑥ 再次放置三层滤纸,用玻璃棒滚压去除气泡; ⑦ 放置硬质海绵,用玻璃棒滚压去除气泡。 6. 将组装好的“三明治”固定在转移支架中,放入转移装置(黑红色),关节朝下,黑对黑,白对红,并放置降温装置,加满电转液,确保覆盖目的蛋白区。 7. ❄️ 将电转装置放入冰盒中,盖上盖子,预估转膜时间: ① 100kD-1.5mm厚胶-10%浓度胶-300mA-60min,根据条件按比例推算; ② 根据蛋白分子量大小确定转膜时间(250mA,1.5kD/min); ③ 不同转膜装置的转移效率不同,换用转膜装置时需重新摸索条件。 8. 栨彧膜如果不敷抗体,可放入PBS中4℃保存。涉及磷酸化实验时,需用TBS。也可以37℃烘干10分钟后室温保存。 注意:判断转膜效果的方法有两种: ① 对转移后的凝胶进行考马斯亮蓝染色或银染; ② 对转后的PDVF膜进行丽春红染色。
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