细胞毒性实验权威发布_细胞毒性实验cck8(2024年12月精准访谈)
CCK-8实验全解,一文搞定! 在进行细胞增殖和毒性实验时,合理的实验分组至关重要。以下是详细的实验分组和操作步骤: 实验分组 实验组:经过药物处理或基因过表达的细胞,加入CCK-8试剂。 对照组:未经过任何处理的对照细胞,加入CCK-8试剂。 空白组:不含细胞的空白培养基,加入CCK-8试剂。 PBS孔:灰色区域,用于防止液体过度蒸发。 젥ꌦ 细胞增殖实验: 每孔加入约1000-2000个细胞,100培养基。 分别在0、24、48、72小时检测细胞的OD值。 细胞毒性实验: 每孔加入约5000~10000个细胞,100培养基(具体细胞数根据细胞大小和增殖速度决定)。 孔板周围加100 PBS防止过度蒸发。 检测方法 在对应的检测时间点,从培养箱取出细胞。 每孔加入10的CCK-8试剂,避光反应1-4小时(具体孵育时间根据细胞数决定,一般OD值在0.8-1.5时线性最佳)。 在酶标仪上450nm下检测OD值,检测前需震荡混匀。 ᠦ事项 换液或不换液均可。 若检测完以后第二天还需要再次检测,则全部吸出黄色反应液,再加入新鲜培养基培养细胞。 通过这些步骤,你可以更好地理解实验组和对照组的区别,并顺利进行CCK-8实验。
CCK-8实验怎么做?时间点控制很重要! 最近在做细胞毒性实验,用CoCl2作为造模药物。实验步骤是这样的:每孔种1万个细胞,培养24小时后给药,再经过24小时后加入CCK-8,然后等待2小时测量吸光度。 我的问题是,吸光度值怎么这么高?是不是细胞数量给多了?朋友建议我调整药物浓度,但我看了一些文章,发现时间点控制很重要。时间太短了会不会影响实验结果?之前试过给5千个细胞,结果太少。 到底该怎么调整药物浓度和时间点呢?真的很迷茫,求指导!
CCK8细胞毒性实验详细步骤指南 1. 细胞种板:首先,用胰酶消化细胞,然后加入10台盼蓝和10细胞悬液,充分混匀后用细胞计数板计数。将活细胞重悬,按照每孔200的体积加入48孔板中,细胞数量根据细胞系不同而有所差异,例如SNU-387和SK-Hep1使用4万细胞,PLC/PRF/5使用2万细胞。加细胞悬液时,先在15ml管中吹匀,然后吸取到1.5ml EP管中,从9点钟方向每孔加200细胞悬液,速度均匀,不用摇晃即可均匀分布。每加3个孔(每个处理设置3个重复)后吹打均匀剩余细胞悬液,再继续加,不要使用排枪,一个孔一个孔加。 培养箱过夜培养:将培养板放入培养箱中过夜培养12小时,使细胞贴壁。 药物处理:弃去旧的培养基,向培养板中加入配置好的相应浓度的药物200。基线组加入200完全培养基,溶剂对照组加入200含相应浓度DMSO的完全培养基。弃去旧的培养基时,注意使用200枪头套10枪头与培养板接触吸干净,接触面积小,避免细胞丢失。 再次培养:将培养板放入培养箱中继续培养48小时。 PBS清洗:弃去旧的培养基,用PBS洗2遍。使用200枪头套10枪头与培养板接触吸干净。 加入CCK8:避光加入充分混匀的CCK8-完全培养基(每孔:20CCK8 + 180完全培养基),此时加3个空白孔。 孵育:将培养板放入培养箱中孵育0.5-4小时。注意观察液体颜色深浅,若此时颜色尚浅,适当延长孵育时间,每半个小时看一下液体颜色,至出现明显趋势即可进行吸光度测定。 吸光度测定:每孔吸取100到96孔板中,用酶标仪测定在450nm处的吸光度。空白孔OD值约为0.3,OD值在0.8-1.2较好,小于2的数据可用。 数据处理:计算细胞活率,绘制图表。 【摸索经验】 铺板数量的摸索:根据细胞加药前的细胞密度、细胞大小、细胞生长速率与培养时间来确定铺板数量。一般来说,加药前细胞密度在50-70%较为合适。 OD值的调整:根据实验具体情况调整OD值,确保数据准确可靠。
CCK-8实验详解,必看! CCK-8,全称为Cell Counting Kit-8,是一种广泛用于细胞增殖和毒性检测的试剂。它具有高灵敏度、无毒性、操作简便和性能稳定等优点。以下是使用CCK-8进行细胞实验的详细步骤: 젧𛆨消化与离心 将处于对数期的贴壁细胞用胰酶消化,待细胞大部分脱落时,加入两倍胰酶体积的含血清培养基终止消化。 将消化后的细胞转移至离心管,用PBS缓冲液冲洗细胞培养瓶,将残留细胞冲洗下来并转移至离心管。 以1000r/min的速度离心3-5分钟,弃去上清液,用1ml含血清培养基重悬细胞。 𛆨计数与稀释 使用细胞计数仪或牛鲍计数板对细胞悬液进行计数,根据计数结果对细胞进行稀释,推荐浓度为5~10*10^5细胞/ml。 ꠦ姧细胞 选择96孔板,设置一个空白对照和7个实验组,每组设置3-5个复孔。每孔加入100ul稀释好的细胞悬液。 在边缘孔加入2滴PBS缓冲液或100-200ul培养基,以减少蒸发带来的影响。 细胞培养与药物处理 将接种好的96孔板放入孵箱,培养12-24小时,待细胞贴壁良好后,吸出各孔培养基。 空白组加入不含药物的培养基,实验组加入含不同浓度药物的培养基。根据药物作用时间,放入孵箱培养4小时、12小时或24小时。 CCK-8孵育与检测 药物处理相应时间后,再次吸出各孔培养基,加入含CCK-8的培养基,CCK-8占细胞培养基体积的1/10。 放入孵箱培养0.5-4小时,待颜色变为橙色即可检测。注意随时观察颜色变化,不宜时间过长。 数据处理 将96孔板取出,放入酶标仪检测,波长设为450nm。处理分析数据,得出实验结果。 通过以上步骤,您可以使用CCK-8进行细胞增殖和毒性检测,希望这些信息对您有所帮助!
젃CK-8细胞实验全流程详解 슃CK-8细胞实验是一种高灵敏度、无放射性的比色检测法,用于测定细胞增殖或毒性实验中活细胞的数量。以下是该实验的原理和步骤: 젥ꌥ理 CCK-8细胞活力检测试剂盒含有WST-8(2-(2-甲氧基-4-硝苯基)-3-(4-硝苯基)-5-(2,4-二磺基苯)-2H-四唑单钠盐),在电子载体存在的情况下,WST-8(粉色)在电子载体(1-MethoxyPMS)的作用下被细胞内线粒体中的脱氢酶还原为黄色甲膦类染料(Formazan),并释放到细胞外溶解在培养基中,生成的甲膦物的数量与活细胞的数量成正比。 ꠥꌦ料及试剂 细胞 96孔细胞培养板 CO2培养箱 酒精灯 移液器 酶标仪 CCK-8试剂盒 实验步骤 制备细胞悬液:取生长状态良好的细胞,制备成一定浓度的细胞悬液,每孔加入100到96孔细胞培养板中。通常细胞增殖实验每孔加入2㗱0ⳤ𘪯100细胞,细胞毒性实验每孔加入5㗱0ⳤ𘪧𛆨/100(具体每孔所用的细胞的数目,需根据细胞的大小、细胞增殖速度的快慢等因素决定)。 加入待测样本:根据实验需求,在培养孔中加入0-10待测样本,继续培养适当时间。如果是做细胞毒性试验,加入毒性物质后的培养时间需要摸索。例如,可以在每孔铺40水凝胶,成胶后,再种细胞,看24h、48h等常规增殖时间。 细胞铺板:根据实验目的不同需要种板块数不同,如测24h、48h、72h三个时间点数,我们则需要准备3块板。96孔板的外圈需要加上PBS,防止液体在烘箱干掉。不要在孔中生成气泡,它们会影响OD值的读数。 加入CCK-8:取10CCK-8溶液加入96孔细胞培养板,在37℃培养箱中继续孵育0.5-4小时。测定吸光度。最好用双波长检测,检测波长450nm,参比波长600nm。参比波长可以过滤掉因为液体浑浊、孔板底部不干净带来的测量误差(OD450-OD600即可)。 计算方法 细胞存活率=[(As-Ab)/(Ac-Ab)]㗱00% 细胞抑制率=(AC-AS)/(Ac-Ab)]㗱00% As:实验孔吸光度(含细胞、培养基、CCK-8溶液和药物溶液) AC:对照孔吸光度(含细胞、培养基、CCK-8溶液,不含药物) Ab:空白孔吸光度(含培养基、CCK-8溶液,不含细胞、药物) 每天定点测量,孵育CCK8的时间也都保持一致。 通过以上步骤,您可以准确地测定细胞增殖或毒性实验中活细胞的数量,为科学研究提供有力支持。
젃CK-8实验注意事项全解析! 젧𛆨接种量:在96孔板中,贴壁细胞的最小接种量为1000个/孔(100培养基)。对于白细胞,接种量应不低于2500个/孔(100培养基)。若使用24孔板或6孔板,需提前计算每孔的接种量,并按培养基总体积的10%加入CCK-8溶液。 药物吸收考虑:在细胞毒性实验中,药物的吸收是一个关键因素。可以在加入药物的培养基中加入CCK-8,测定450nm的吸光度作为空白对照。 培养条件:在培养箱中孵育时,培养板最外一圈的孔容易干燥挥发,造成体积不准确,增加误差。建议最外一圈的孔只加PBS,不作为测定孔用。 ⏱️ 培养时间:加入待测物后,培养的具体时间取决于待测物质的性质和细胞的敏感性,如6、12、24、48h。实验时可以选择不同作用时间进行细胞毒性检测。 培养基更换:如果待检测物质有氧化性或还原性,在加入CCK-8之前应更换新鲜培养基,以去掉待测物质的影响。如果影响较小或没有影响,可以不更换培养基,直接扣除培养基中加入药物后的空白吸收。 显色时间:正常显色时间为1-4h,可以每半小时测定一次OD值,使其OD值保持在1-2之间后固定显色时间重复实验。 延长显色时间:如果显色不够,可以延长培养时间,特别是血液细胞需要较长的显色时间(5-6h)。 测定波长:对于高浑浊度的细胞悬液,建议采用双波长进行测定,检测波长450-490nm,参比波长600-650nm,推荐使用650nm。 保存方法:若暂时不测定OD值,可以在各孔中加入10 0.1 M的HCL溶液或1% w/v SDS溶液,室温避光保存,24h内测定OD值不会发生变化。 CCK-8保存:新鲜的CCK-8试剂为粉红色,储存时间过长则颜色加深、效率变低,最好不使用。通常情况下CCK-8试剂在0-5℃避光条件下可保存至少6个月,在-20℃下避光可以保存1年。
电子烟 vs 卷烟:谁更健康? 大家好!今天我们来聊聊一个备受关注的话题——电子烟和传统卷烟,到底哪个对身体的伤害更小呢?作为一名控烟报道多年的记者,我有幸参观了RELX悦刻生命科学实验室,今天就带大家一起深入了解一下。 细胞实验结果 中山大学药学院的研究团队在全球毒理学权威期刊《毒理学快报》上发表了论文,指出在相同尼古丁剂量下,电子烟对多种细胞的毒性显著低于卷烟。研究还发现,电子烟导致的细胞ROS远低于卷烟,且没有启动基因层面的炎症信号通路。这证明了电子烟的细胞毒性显著低于卷烟。 动物实验结果튥襏椸项研究中,研究人员选用了RELX悦刻西瓜味电子烟及某款市售卷烟作为样品,将32只小鼠随机分为4组,分别暴露于洁净空气、低剂量电子烟气溶胶、高剂量电子烟气溶胶、卷烟烟雾中10周。结果显示,接触卷烟的小鼠肺系数显著升高,气管形态发生变化,而接触电子烟的小鼠肺系数无显著变化,气管形态正常。此外,卷烟暴露导致小鼠多项肺功能指标异常,但电子烟组仅有一个指标下降。病理学结果显示,卷烟和电子烟均可能导致小鼠肺部异常,但卷烟导致的损害更为明显。 人体临床研究슦楈起了国内首个聚焦“电子烟安全性”的临床研究,由中山大学-雾芯科技雾化产品评价实验室承接。该研究拟招募36名有吸烟习惯的健康受试者,随机分组,观察不同产品对受试者呼吸功能、心血管功能的短期影响。虽然目前具体结果尚未发布,但这一举措无疑为电子烟的安全性提供了更多科学依据。 总结 综合以上研究结果,我们可以得出结论:在相同尼古丁剂量下,电子烟对身体的伤害显著小于传统卷烟。然而,这并不意味着电子烟完全无害,它仍然含有尼古丁等成瘾物质。因此,对于想要戒烟的朋友来说,最好的选择是完全远离任何形式的烟草制品。ꊥ𘌦今天的分享能给大家带来一些有用的信息。如果你有任何疑问或想法,欢迎留言讨论哦!쀀
cck8实验步骤 즎⧴⤸同药物浓度对中性粒细胞活性的影响,我们利用CCK8试剂进行了一项实验。首先,我们准备好了原代小鼠骨髓中性粒细胞、熬制过的中药、1640培养基以及CCK8试剂。 在进行细胞毒性实验时,我们需要排除药物本身颜色对吸光度的影响。对于贴壁细胞,可以直接通过洗涤来去除药物,但对于悬浮的中性粒细胞,我们采用了离心的方法,以减少细胞在清洗过程中的损失。 具体操作如下:在孵育完成后,取出96孔板,以260rcf的速度离心5-10分钟,然后抽出药物,加入100-120微升的PBS进行清洗,重复两次。最后,加入CCK8试剂继续孵育4小时,之后测量OD值。 通过这项实验,我们可以清晰地看到不同药物浓度对中性粒细胞活性的影响,为药物研发和评价提供有力的数据支持。
药理学细胞实验必学10大技术! 细胞实验是许多实验室新手接触的第一类实验。掌握细胞培养后,接下来就是进行各种细胞实验了。以下是10个药理学细胞实验技术,助你轻松上手! 基础篇 슧𛆨划痕实验 细胞划痕实验(wound healing)是一种简单的方法,用于测定细胞的迁移和修复能力。它类似于体外伤口愈合模型。 细胞毒性分析 细胞毒性是指由细胞或化学物质引起的单纯细胞杀伤事件,不依赖于凋亡或坏死的细胞死亡机理。常用的检测方法有CCK-8法、MMT法和LDH法。 细胞增殖分析 Cell Counting Kit-8(CCK-8)试剂可以方便准确地用于细胞增殖和毒性分析。 细胞RNA提取实验 Trizol是一种单相溶液,由苯酚和异硫氰酸胍等组成。通过加入Trizol,能破坏细胞并溶解细胞成分,利用氯仿的萃取得到上层水相(含RNA)、界面层和下层的红色有机相(含DNA和蛋白)。得到的水层用异丙醇沉淀并经过酒精的洗涤去除杂质,能分离大小不一的各种RNA。用途包括RT-PCR、分子克隆、Northern-Blot、RNA体外转录与翻译等。 细胞蛋白质提取实验 细胞蛋白的提取是生物学实验中一种常见的实验方法,是很多其他生物学实验的前提。通过加入裂解缓冲溶液以及相应的蛋白酶抑制剂,能较好的保持细胞内生物大分子的天然状态。在透膜剂以及超声破碎仪的辅助下,细胞将发生破裂,内容物释放出来。用途包括蛋白免疫印迹、蛋白免疫沉淀、核浆分离等制备型和分析型实验。 进阶篇 细胞ROS实验 活性氧(Reactive oxygen species, ROS)是超氧自由基、过氧化氢及其下游产物过氧化物和羟化物等的总称。参与细胞生长增殖、发育分化、衰老和凋亡以及许多生理和病理过程,与多种神经退行性疾病相关,如阿兹海默症、帕金森症等。通过检测ROS水平,可以评估疾病模型是否建立成功,亦可作为药效评价指标。 细胞免疫化学 & 细胞免疫荧光 免疫细胞化学与免疫细胞荧光两者实现的实验目的相似,但各有优缺点。 细胞免疫蛋白共沉淀 免疫共沉淀(Co-Immunoprecipitation,Co-IP)是一种利用抗原与抗体之间的专一性为基础,广泛应用于研究蛋白质与蛋白质相互作用的经典研究方法。 细胞转染和分析(稳转;瞬转) 细胞转染是指将外源分子如DNA、RNA等导入真核细胞的技术。 这些实验技术是药理学研究中不可或缺的一部分,掌握它们将为你未来的实验室工作打下坚实的基础!
찟窠物理实验的常用仪器与软件一览 在基础物理实验室中,有许多常用的实验仪器和软件,帮助科学家们进行各种实验。以下是一些常见的实验方法和仪器: 基因鉴定:包括DNA提取、PCR体系、电泳技术等,用于研究基因敲除鼠、基因敲入鼠和点突变鼠等。 石蜡切片/冰冻切片:通过HE染色、免疫荧光和免疫组化等技术,观察细胞和组织结构。 qPCR:包括引物设计、RNA提取、逆转录和qPCR体系配置,用于定量分析基因表达。 Western blot (WB):从组织样本中提取蛋白质,通过制胶、电泳、转膜、孵抗体和曝光等步骤,检测蛋白质表达。 Elisa:用于微量蛋白或物质的定量分析。 细胞实验:包括细胞复苏、培养、传代、冻存、计数、转染以及细胞增殖/毒性实验、迁移实验、成管实验、免疫荧光染色、流式细胞术、细胞能量代谢实验、细胞周期检测实验和细胞凋亡实验等。 常用仪器:如离心机、涡旋混匀仪、普通显微镜、荧光显微镜、共聚焦显微镜、酶标仪、PCR仪、荧光定量PCR仪、流式细胞仪和海马仪等。 常用软件:包括统计软件如ImageJ、GraphPad Prism和SPSS,文献管理软件如EndNote和Zotero,绘图软件如Draw.io和PS,以及引物设计软件如Primer Premier 5和SnapGene。 通过这些仪器和软件,科学家们可以进行各种物理实验,探索自然界的奥秘。
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