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透射电镜最新视觉报道_透射电镜工作原理(2024年11月全程跟踪)

内容来源：卡姆驱动平台所属栏目：热点更新日期：2024-11-27

透射电镜

[扫描电镜用户培训会]飞纳电镜于今期日举办了 2024 年度上海区域线下用户培训会，助力用户更好的使用飞纳电镜。#飞纳电镜# 培训会上，我们向用户朋友分享了新的飞纳电镜产品知识，针对用户扫描电镜使用领域，分享高分子、锂电、金属等行业经典应用案例，扩展了扫描电镜样品制备方法及检测手段；工程师为用户带来了飞纳电镜的新功能和新配件，如 ChemiSEM 彩色成像技术、ChemiPhase 物相分析系统以及扫描-透射电镜（SEM-STEM）等，大大丰富了飞纳电镜的使用场景；丰富的售后服务产品，解决管理之忧，帮助用户维持设备优异性能；最后工程师解答了用户在操作扫描电镜期间存在的各类疑问，纠正错误操作，保持设备长久稳定运行。 #扫描电镜# #台式扫描电镜# @扫描电镜 #科研# [基木鱼链接]

【「电子科技大学分析测试中心」透射电镜助力新型MXene材料卓越微波吸收性能机理研究】「电子科技大学超话」近日，由电子科技大学分析测试中心提供数据支持的又一项高水平科研成果——电子科学与工程学院陆海鹏研究员团队最新研究论文《Achieving excellent microwave absorption performance in ultr ...

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球差电镜：磁性材料研究的新利器 𐟌 ### 球差电镜的基本原理 𐟌 在透射电子显微镜（TEM）的世界里，球差是个绕不开的话题。球差，也就是球面像差，是影响TEM分辨率的关键因素之一。简单来说，透镜系统（无论是光学透镜还是电磁透镜）都无法做到完美无瑕。对于电磁透镜，透镜边缘的会聚能力比中心更强，导致电子光线无法完美会聚到一个焦点，从而影响成像质量。为了解决这个问题，科学家们发明了球差校正透射电镜，通过安装球差校正装置（比如多极子校正装置）来调节和控制电磁透镜的聚焦中心，实现对球差的校正，进而提升TEM的分辨率。球差电镜的分类 𐟔 根据校正装置的安装位置不同，球差电镜可以分为两种类型：AC-TEM和AC-STEM。 AC-TEM：当你使用Image模式时，影响成像分辨率的主要因素是物镜的球差，因此球差校正装置安装在物镜位置。 AC-STEM：当你使用STEM模式时，影响分辨率的主要因素是聚光镜的球差，因此球差校正装置会安装在聚光镜位置。球差电镜的优势 𐟌Ÿ 高分辨率：球差校正技术使得ACTEM的分辨率能达到埃级甚至亚埃级别，远高于传统TEM的纳米级或亚纳米级分辨率。多功能性：ACTEM不仅用于观察样品的形貌和电子衍射图案，还能进行EDS和EELS等成分分析，以及原位电子显微学研究。应用领域广泛：ACTEM在材料科学、物理学、基础医学、化学工程等领域都有重要应用，特别是在纳米材料的研究中发挥着不可替代的作用。球差电镜的出现，无疑为科研工作者提供了一柄利器，让他们能够更深入地探索微观世界的奥秘。无论是磁性材料、强磁材料，还是其他各种材料，球差电镜都能以其卓越的分辨率和多功能性，为科研提供强有力的支持。

线粒体透射电镜图片分析：形态与功能揭秘线粒体（mitochondrion）是细胞中的“能量工厂”，负责将化学能转化为ATP，为细胞提供能量。在透射电子显微镜（TEM）下，线粒体的复杂形态和结构可以清晰观察到。线粒体被双层膜包绕，外层膜平滑，而内层膜则向内凹陷形成嵴，这增加了线粒体的表面积，提高了其生理功能的效率。线粒体的形态多样，通常呈圆形或卵圆形，有时也呈细长线状。其横径约为0.5-1，长径变化较大，可达2-5，甚至在骨骼肌细胞中可达8-10。线粒体的数量和形态与细胞的代谢活动有关，代谢活跃的细胞中线粒体数量较多，动物细胞比植物细胞含有更多的线粒体。透射电子显微镜（TEM）能够提供更详细的线粒体结构信息，包括外膜、内膜、嵴和基质等部分。这些结构对于线粒体的功能至关重要，因为它们共同参与了细胞呼吸和ATP的产生过程。当细胞受到损伤或发生病变时，线粒体的形态可能会发生改变。以下是一些可能的变化：肿胀：线粒体可能会变得肿胀，体积增大。这可能是由于线粒体膜的通透性增加，导致线粒体内部的物质泄漏。嵴的减少或消失：线粒体的嵴可能会减少或消失，这可能会影响线粒体的能量产生功能。形态异常：线粒体可能会呈现出异常的形态，如变形、破裂或碎片化。分布改变：线粒体的分布可能会发生改变，例如在细胞内的位置改变或聚集在特定区域。通过观察这些变化，可以了解细胞的状态和功能是否正常。

球差电镜样品制备与仪器设置全攻略一、样品准备 𐟧ꊦ 𗥓制备首先，对样品进行初步处理，如切割和研磨，使其尺寸和形状适合电镜观察。对于某些材料，可能需要将样品打磨至特定厚度（如50um以下），并使用AB胶等粘合剂将其固定在铜环上。使用离子减薄仪等设备对样品进行进一步的减薄处理，直至样品出现薄区（通常要求薄区厚度在100nm以下），以便在电镜中观察其形貌和结构。样品检查在进行球差电镜测试之前，最好先用普通的高分辨透射电镜（HRTEM）对样品进行预观察，以评估样品的浓度、稳定性、目标位点数量以及是否需要进一步的预处理等。二、仪器选择与设置 𐟔犩€‰择合适的球差电镜根据实验需求选择合适的球差电镜型号，如Titan G2 60-300、Titan G3 50-300 PICO等。这些电镜通常配备有先进的球差校正系统，能够实现亚埃尺度的空间分辨率。设置测试条件根据样品的特性和实验需求设置电镜的加速电压、束流大小等参数。不同的球差电镜型号有其对应的加速电压范围，如FEI TITAN 80-300就是在80-300kV电压下运行。根据需要选择合适的成像模式，如STEM（扫描透射电子显微镜）模式或TEM（透射电子显微镜）模式，并安装相应的球差校正装置。

透射电镜忘关灯丝 𐟔 分析原理：透射电子显微镜（TEM）通过电子枪发射电子束，在真空通道中沿镜体光轴穿越聚光镜，形成一束尖细、明亮且均匀的光斑，照射在样品室内的样品上。样品内部的致密区域透过的电子量少，稀疏区域透过的电子量多。经过物镜的会聚调焦和初级放大后，电子束进入下级透镜和投影镜进行综合放大成像，最终被放大的电子影像投射在观察室内的荧光屏板上，荧光屏将电子影像转化为可见光影像以供观察。 𐟓‹ 样品要求：厚度不超过100nm 粉体、液体样品可测试，薄膜或块状样品需另行制样（如离子减薄、包埋切片、FIB等）制样时一般选用普通铜网或微栅铜网，颗粒直径小于10nm的样品需用超薄碳膜制样若样品含Cu，需拍EDS能谱和mapping时可选镍网或钼网常用溶剂为乙醇，其次是水（易挥发，不会在碳膜上留下痕迹），其他溶剂（如甲苯、丙酮等）如需自备超声时间默认5min，如有特殊要求请提前说明 𐟓‹ 样品制备注意事项：仅针对材料类样品，生物样品另作说明样品需无毒、无放射性、干燥无污染、热稳定性好、耐电子束轰击样品中是否含有有机物：有机物在高压下不稳定，拍摄过程中极易被打散，会污染仪器。如需拍摄，请务必与工作人员确认。带有机物的样品无法拍摄mapping 样品是否有磁性：磁性颗粒易吸附到极靴上，原则上电镜（TEM）不拍磁性样品。根据不同老师的经验，对所拍样品中磁性强弱的接受度不同，请如实填写样品是否含磁及磁性的强弱 𐟓‹ 测试流程：现场测试：不能现场测试样品，但可以通过云视频进行测试寄样测试：会给到您一个测试单，您需写清楚制样要求（分散剂、超声时间、铜网等）、测试要求（标尺、拍摄位置、形貌效果等）、测试目的等，测试老师会按您的要求来拍摄 𐟓‹ 图片提供：每样品提供8-10张左右形貌图，5张左右高分辨图，具体根据样品的拍摄情况而定

球差电镜：提升TEM分辨率的利器 𐟔슣## 球差电镜的基本原理球差，也就是球面像差，是透镜像差的一种，主要影响透射电子显微镜（TEM）的分辨率。简单来说，透镜系统（无论是光学透镜还是电磁透镜）都无法做到完美无瑕。对于电磁透镜来说，透镜边缘的会聚能力比中心更强，导致所有光线（电子）无法会聚到一个焦点，从而影响成像质量。球差校正透射电镜通过安装球差校正装置（如多极子校正装置）来调节和控制电磁透镜的聚焦中心，实现对球差的校正，进而提高TEM的分辨率。球差电镜的分类根据校正装置安装的位置不同，球差电镜可以分为两种类型：AC-TEM和AC-STEM。 AC-TEM：在使用Image模式时，影响成像分辨率的主要因素是物镜的球差，因此球差校正装置安装在物镜位置。 AC-STEM：在使用STEM模式时，影响分辨率的主要因素是聚光镜的球差，因此球差校正装置会安装在聚光镜位置。球差电镜的优势高分辨率：球差校正显著减少了像差，使得ACTEM的分辨率能达到埃级甚至亚埃级别，远高于传统TEM的纳米级或亚纳米级分辨率。多功能性：ACTEM不仅可用于观察样品的形貌和电子衍射图案，还能进行EDS和EELS等成分分析，以及原位电子显微学研究。应用领域广泛：ACTEM在材料科学、物理学、基础医学、化学工程等领域均有重要应用，特别是在纳米材料的研究中发挥着不可替代的作用。总的来说，球差电镜的高分辨率和多功能性使其在科研领域中具有广泛的应用前景。无论是材料科学还是医学研究，它都是一个强大的工具。

𐟔 探索TEM的奇妙世界 𐟒ᩀ射电镜，带你领略微观世界的奥秘！清晰高端的图像，展现细胞的精细结构，为科研提供强大支持。𐟔즗 论是小鼠心肌、脑干，还是真菌、线粒体，都能一览无余。𐟒‰想要了解更多关于TEM的精彩内容吗？快来加入我们，一起探索这个神秘而有趣的世界吧！𐟌Ÿ

透射电镜生物样本预处理全攻略透射电镜（TEM）观察生物样本需要经过一系列预处理步骤，以确保样本的完整性和观察效果。以下是详细的预处理流程：培养细胞的离心固定收集法 𐟧슊体外培养的动物细胞分为贴壁、悬浮和三维培养三种类型。对于贴壁细胞，推荐使用刮取法分离细胞，以保持细胞的膜性结构完整。如果需要观察细胞连接，应避免使用消化法。将刮取的细胞收集在1.5ml的尖底离心管中，进行低速离心短时，使细胞富集。然后加入电镜固定液重悬细胞，立即以10000 ~ 12000 rpm离心10 ~ 12 min。注意，加入固定液后要尽快高速离心，以免细胞分散丢失。离心后，细胞团应小于半颗绿豆大小，以确保后续制样过程中的渗透和固定效果。水平转子离心机处理的细胞团为半球形，而固定角转子离心机则制备出拖尾的细胞团。如果细胞量控制得当，水平转子离心机的细胞团质量通常更好。悬浮培养的细胞可直接收集在1.5ml的尖底离心管中，从低速离心弃上清开始操作，后续步骤与贴壁细胞相同。高速离心后的处理 𐟔„ 高速离心成团后，室温静置离心管30 min，吸去管内液体，沿管壁小心加入新的电镜固定液，即可送检或转入4 ~ 8℃暂存。微粒悬液的预处理 𐟌 对于具有长突起或特殊结构的细胞，或者纳米医药材料、病毒、外泌体等样本，不适合离心成团。这类情况，建议使用0.5 ~ 1ml的小管加满，直接送检微粒悬液。如果需要做超薄切片，电镜技术人员会根据样本性质进行富集、粘结等处理。其他样本的预处理 𐟧ꊊ漂洗过的细菌、真菌，抗凝处理的血液细胞，以及经洗涤操作的精子，都可以参考培养细胞的预处理方式，以离心团的形式送检做TEM制样和观察。只是某些场合使用的固定液种类有所区别。通过以上步骤，您可以更好地准备生物样本进行透射电镜观察，确保观察结果的准确性和可靠性。

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