giemsa权威发布_giemsa染色(2024年12月精准访谈)
瑞氏-吉姆萨染色法:细胞染色全攻略 瑞氏-吉姆萨染色(Wright-Giemsa Staining)的原理: 瑞氏染料由酸性染料伊红和碱性染料亚甲蓝组成。血红蛋白和嗜酸性颗粒为碱性蛋白质,与酸性染料伊红结合呈红色;细胞核蛋白和淋巴细胞胞浆为酸性蛋白质,与碱性染料美蓝或天青结合,呈紫蓝色;中性颗粒呈等电状态,与伊红和美蓝均可结合,呈淡紫色。 吉姆萨染料由伊红和天青组成,染色原理与瑞氏染色法基本相同。瑞氏染色法对细胞浆内的颗粒染色效果好,但对细胞核的染色不如吉姆萨染色法。吉姆萨染色法对细胞核着色好,但对胞浆颗粒着色较差,且有时对细胞核着色较深,核结构显示不佳。为兼顾二者之长,常用瑞氏-吉姆萨复合染色法。 用途和目的: 常用于血液涂片、肺泡灌洗液涂片、骨髓细胞涂片、细菌、染色体、组织切片等的染色。标本染色后,相应各类细胞呈现不同的着色,从而达到辨别其形态特征的目的。 染色步骤: 自来水流水缓慢冲洗晾干后的载玻片洗去杂质,注意流水从涂片上方流下,避免直接冲洗细胞; 将载玻片晾干后置于瑞氏染液中染色10分钟; 尽量沥干载玻片,再置于吉姆萨染液中染色4分钟。染色完毕后流水缓慢冲洗载玻片,将多余染液洗去; 载玻片晾干后显微镜下观察。 此法常用于小鼠肺泡灌洗液涂片的染色,其他标本可以根据染色结果适当调整染色时间。 显微镜下细胞的辨别: 红细胞:平均直径7,细胞呈粉红至红色,中央因双凹圆盘结构而呈现空白。 单核细胞:胞体圆至椭圆形,直径12-20,胞浆灰蓝色且稍有粗糙感,半透明似毛玻璃,胞质中常有小空泡。成熟的单核细胞胞核呈肾形、马蹄形、不规则形等,细胞核常有扭曲和折叠感。 淋巴细胞:分大(直径12-15)、小(直径6-9)两大类,圆形或椭圆形,胞质淡蓝色透明,无颗粒或偶有数颗紫红色的嗜天青颗粒。核圆形,直径接近细胞直径80%,染色质呈浓集的团块状。 中性粒细胞:胞体圆形至椭圆形,直径10-15。胞质呈无色或极浅的淡粉红色,弥散分布许多浅红或浅紫的细小颗粒。细胞核形态多样,可呈长杆状,也可为分叶状核,2-5叶不等,叶与叶间有细丝相连。 嗜酸性粒细胞:细胞直径13-15,胞浆中充满嗜酸性颗粒,颗粒粗大整齐,排列均匀紧密,为砖或鲜红色。在染色较深的涂片中,颗粒呈现深橙、棕至咖啡色。细胞核分叶,多为两叶呈眼镜状,颜色为深紫色,偶见3叶。
细胞周期的测定方法与步骤详解 一、原理 细胞周期是指细胞从一次分裂结束到下一次分裂结束所经历的时间。它反映了细胞的增殖速度。单个细胞的周期可以通过缩时摄影来测定,但这种方法不能代表细胞群体的周期。因此,目前多采用其他方法测定群体周期。 测定细胞周期的方法有很多,如同位素标记法和细胞计数法等。这里介绍一种利用BrdU渗入法测定细胞周期的方法。BrdU(5-溴脱氧尿嘧啶核苷)加入培养基后,可作为细胞DNA复制的原料。经过两个细胞周期后,细胞中两条单链均含BrdU的DNA将占1/2,反映在染色体上应表现为一条单体浅染。如果经历了三个周期,则染色体中约一半为两条单体均浅染,另一半为一深一浅。如果细胞仅经历了一个周期,则两条单体均深染。通过计算分裂相中各期的比例,即可算出细胞周期的值。 二、仪器、用品与试剂 仪器、用品:同常规细胞培养 试剂:BrdU(1.0mg/ml),甲醇、冰醋酸,Giemsa染液,秋水仙素,2㗓SC液 三、操作步骤 细胞生长至指数期时,向培养液中加入BrdU,使终浓度为10/ml。 44小时后加秋水仙素,使每ml中含0.1。 48小时后常规消化细胞至离心管中,注意培养上清的漂浮细胞也要收集到离心管中。 常规染色体制片(见第三部分:染色体技术)。 染色体玻片置56℃水浴锅盖上,铺上2㗓SC液,距紫外灯管6cm处紫外照射30分钟。 弃去2㗓SC液,流水冲洗。 Giemsa液染色10分钟,流水冲洗,晾干。 镜检100个分裂相,计、二、三、四细胞期分裂指数。 计算:细胞周期(Tc)=48/{(M1+2M2+3M3+4M4)/100}(小时) 附:(1)BrdU配制:BrdU 10mg+双蒸水10ml,4℃下避光保存。 (2)2㗓SC配制:NaCl 1.75克,柠檬酸三钠ⷲH2O 0.88克,加水至100ml,4℃保存。
젧𛆨增殖力揭秘:平板克隆实验全解析 𑠧𛆨克隆形成实验是生物学研究中的经典方法,它能够直观地反映细胞群体的依赖性和增殖能力。通过这个实验,我们可以了解到细胞在体外环境下的增殖情况,以及各种理化因素对细胞克隆形成能力的影响。 实验目的 1️⃣ 评估细胞在处理后的增殖能力,通过克隆形成来观察细胞在培养板上的生长情况。 2️⃣ 探索不同杀伤因素(如药物、基因等)对肿瘤细胞增殖能力或群体依赖性的影响。 3️⃣ 预测细胞在体内的成瘤性,体外克隆能力越强,体内成瘤性越强,为体内实验提供参考。 ꠥꌨ所需材料: 基础培养基(根据细胞类型选择) 胎牛血清 胰蛋白酶 PBS 青霉素-链霉素溶液(100X) 多聚甲醛固定液 结晶紫染液 Giemsa染液 基本步骤: 1️⃣ 取对数生长期的细胞,用0.25%胰蛋白酶消化并吹打成单个细胞,悬浮在10%胎牛血清的DMEM培养液中。 2️⃣ 将细胞悬液进行梯度倍数稀释,分别以每皿50、100、200个细胞的密度接种到含10mL预温培养液的皿中,轻轻转动使细胞均匀分布。 3️⃣ 将培养皿放入37℃、5% CO2及饱和湿度的细胞培养箱中培养2~3周,经常观察,当出现肉眼可见的克隆时终止培养。 4️⃣ 弃去上清液,用PBS小心浸洗2次,加入4%多聚甲醛固定细胞15分钟。然后去固定液,加入Giemsa染色液染色10~30分钟,用流水缓慢洗去染色液,空气干燥。 5️⃣ 将平皿倒置并叠加一张带网格的透明胶片,用肉眼或显微镜(低倍镜)计数大于10个细胞的克隆数,最后计算克隆形成率。 数据分析 克隆形成率 = (克隆数 / 接种细胞数) 㗠100% 通过这个实验,我们可以深入了解细胞的增殖特性,为后续的实验研究提供有力的数据支持。
젥🥅隆形成实验全攻略:步骤与技巧 实验步骤(以6孔板为例) 1️⃣ 制备细胞悬液:将处于对数生长期的单层细胞进行常规消化离心,收集细胞沉淀。重悬细胞沉淀并计数,可倍比稀释至1㗱0ⳤ𘪯mL。 2️⃣ 接种细胞:以每孔50、100、200个细胞的梯度密度接种六孔板中(根据细胞生长情况确定),补加3mL培液,置于培养箱中培养,静置2-3周。若需加药处理,可于第二天贴壁后加药。 - 注意事项:计数要准确,最好计3遍取平均值;接种细胞时要晃匀;培养过程中注意培液颜色,必要时更换培液并观察污染情况。 3️⃣ 染色:当培养皿中出现肉眼可见的克隆时,停止培养,弃掉培液,用PBS小心洗涤2-3次,弃掉PBS。每孔加入1ml甲醇固定15min,弃固定液。每孔加入1ml 0.1%结晶紫或Giemsa染色液染色10-30min,流水缓缓洗去染液,空气干燥。 - 注意事项:培养过程中可隔两三天在显微镜下观察,若大多数克隆含50个以上细胞,即可终止培养。 4️⃣ 计数:镜下计数含50个细胞以上的克隆数并拍照,取3个复孔的克隆平均值进行计算。实验至少重复2次。 常见问题解答 细胞密度为多少合适? 细胞接种密度与实验结果密切相关。若细胞太多,形成克隆数目太多,难以拍到单独的克隆团;若细胞太少,可能无法形成克隆,影响增殖能力判断。一般来说,正常增殖速度为1:5-1:10传代,3天长满细胞,可以接种500个细胞,其余增殖缓慢细胞,可以接种800-1000。 细胞接种后培养的时间如何确定? 通常情况下,单个细胞在体外增殖6代以上所组成的细胞群称为一个阳性克隆,时间约为一周;但具体时间因细胞增殖能力而异,因此应密切关注细胞生长情况,隔天在显微镜下观察克隆情况,若单个克隆细胞数到达50个左右即可固定细胞。 细胞铺板均匀的重要性 若铺板不均匀,细胞稀的地方形成的克隆少,而密的地方克隆多,一方面影响统计结果,并且拍出的图片不美观。 细胞未形成克隆的原因? 并非每种细胞都可以形成克隆,克隆形成率与细胞本身增殖能力有关。还与接种细胞密度、加入培养液的体积、血清浓度有关。因该实验处理时间较长,应给细胞多加培养基,如每孔4ml,或者3天更换一次培养基,以供给细胞充足的营养。
如何测定细胞周期:详细步骤与注意事项 一、原理 细胞周期是指细胞从一次分裂结束到下一次分裂结束所经历的时间。它反映了细胞的增殖速度。测定细胞周期的方法有很多,其中一种是利用BrdU(5-溴脱氧尿嘧啶核苷)渗入法。BrdU加入培养基后,可以作为细胞DNA复制的原料。经过两个细胞周期后,细胞中两条单链均含BrdU的DNA将占1/2,反映在染色体上应表现为一条单体浅染。如果经历了三个周期,则染色体中约一半为两条单体均浅染,另一半为一深一浅。如果细胞仅经历了一个周期,则两条单体均深染。通过计算分裂相中各期比例,就可以算出细胞周期的值。 二、仪器、用品与试剂 仪器、用品:同常规细胞培养 试剂:BrdU(1.0mg/ml),甲醇、冰醋酸,Giemsa染液,秋水仙素,2㗓SC液 三、操作步骤 细胞生长至指数期时,向培养液中加入BrdU,使终浓度为10/ml。 44小时后加秋水仙素,使每ml中含0.1。 48小时后常规消化细胞至离心管中,注意培养上清的漂浮细胞也要收集到离心管中。 常规染色体制片(见第三部分:染色体技术)。 染色体玻片置56℃水浴锅盖上,铺上2㗓SC液,距紫外灯管6cm处紫外照射30分钟。 弃去2㗓SC液,流水冲洗。 Giemsa液染色10分钟,流水冲洗,晾干。 镜检100个分裂相,计、二、三、四细胞期分裂指数。 计算:细胞周期(Tc)=48/{(M1+2M2+3M3+4M4)/100}(小时) 注意事项 BrdU配制:BrdU 10mg+双蒸水10ml,4℃下避光保存。 2㗓SC配制:NaCl 1.75克,柠檬酸三钠ⷲH2O 0.88克,加水至100ml,4℃保存
实验室有毒试剂清单|珍爱生命,远离实验 昨天在实验室搞多聚甲醛的时候,没在通风橱里操作,结果今早起来头巨痛!真是教训啊,大家做实验一定要戴好口罩,做好防护!立马整理了一下实验室里的有毒试剂,绝不做实验室的牺牲品! DMSO(二甲基亚砜)ꊨ🙤𘪤𘜨忧褺冻存液的配置,还有作为常见粉剂的溶剂。但它有血管毒性和肝肾毒性,小心为上! EB(溴化乙锭) EB用于琼脂糖凝胶电泳的核酸染料,剧毒!我们学校仪器平台都不让用EB显影,致癌性很强,大家一定要小心。 PCR实验슥PCR实验的时候,苯、二甲苯、酚、trizol、氯仿这些有机溶剂都是致癌的。还有DEPC(焦炭酸二乙酯),用于溶解RNA,但它是潜在的蛋白质变质剂。做PCR一定要戴好口罩! WB实验 WB实验中,PMSF用于蛋白提取,高强度毒性;SDS(十二烷基硫酸钠)用于SDS-PAGE电泳凝胶配置,有刺激作用,可能引起呼吸系统过敏性反应;丙烯酰胺(未聚合)是蛋白电泳凝胶原料,有潜在神经毒性;TEMED(四甲基乙二胺)用于SDS-PAGE凝胶配置,催化凝胶凝固,但易挥发,强神经毒性。 Triton x-100🙤𘪤𘜨忦刺激性,可以因吸入或皮肤吸收受害,大家要小心。 多聚甲醛♂️ 多聚甲醛用于组织固定灌流,易挥发且剧毒。昨天我就是因为这个倒霉东西头才这么痛的。 DTT (二硫苏糖醇)ꊥ子有机还原剂,散发出难闻的气味。可以因吸入、咽下或皮肤吸收而危害健康。 吉姆萨 Giemsa 吉姆萨染料有极强的毒性,可致命或引起眼睛失明。可以通过吸入和皮肤吸收,其可能的危险是不可逆的效应。 过硫酸铵 APS动🇧 𘩓膜和上呼吸道组织、眼睛和皮肤有极大危害性。吸入可致命。 甲醇有毒,致命剂量大约是70毫升。甲醇的毒性对人体的神经系统和血液系统影响最大。它经消化道、呼吸道或皮肤摄入都会产生毒性反应,甲醇蒸汽能损害人的呼吸道粘膜和视力。佩戴好防毒面具和护目镜,避免接触其蒸汽,注意在通风橱内操作。 乙醚劤高度挥发,遇明火、高热极易燃烧爆炸,并有特殊气味。化学性质不稳定,日光下去空气接触,易形成爆炸性过氧化物过氧化乙醚。应小心使用。广泛用作麻醉剂。 希望大家在做实验的时候一定要注意安全,珍爱生命!
急性臭氧暴露对大鼠肺部细胞遗传毒性的影响是什么? ? 前言 ? 臭氧(O3)是氮氧化物和挥发性有机物的二次污染物。近年来,光化学反应造成的大气O3污染逐渐变得较为严重,其主要来源是光化学烟雾,其次还可来源于消毒过程中紫外灯的使用等。 ? 已有研究表明,臭氧对植物、体外培养的微生物和细胞具有遗传毒性,关于体外培养细胞的研究多集中于对淋巴细胞、 A549细胞系、骨髓细胞等,对体内肺部细胞的遗传毒性研究相对较少,且仅局限于某一个水平探讨引起的遗传毒性。 ?? 将肺组织单细胞悬液涂于干净的载玻片上,自然晾干后,插入含甲醇固定液的槽中固定10 min,取出后放入Giemsa染色液中染色15 min,超纯水冲 洗,晾干,油镜下观察计数。 ? 遵循最常用的方法,即 Z字形方法来筛选载玻片。在每张载玻片上计数 1 000个具有完整细胞核和细胞边界的细胞。从1 000个完整的细胞中计数MN的数量。 ? ?DNA-蛋白质交联实验 ? 取0.5 ml肺组织制备好的单细胞悬液,加入 0.5 ml SDS溶液,轻轻摇匀,65℃水浴加热10 min。 将100 Tris-HCl-KCl溶液加入到上述溶液中。充分混合后,将液体倒入1 ml聚丙烯移液器吸头中, 重复上述步骤7次,使DNA长度一致。 ? 冰上预冷5 min,4℃10 000 r/min离心5 min,将上清液转移到 另一个离心管中保存。向沉淀中加入1 ml洗涤缓 冲液,65℃水浴加热10 min。冰上预冷5 min。4℃,10 000 r/min离心5 min,收集上清到另一离心管中。 ? 向上述沉淀中加入0.5 ml洗涤缓冲液和0.5 ml 蛋白酶K溶液,充分混匀。60℃水浴中加热3 h,冰 上骤冷5 min。4℃,12 000 r/min离心10 min,收集上清。 ? 用洗涤缓冲液制备各浓度的小牛胸腺DNA 溶液1 ml,使其终浓度为0、50、150、250、375、500、 750、1000、1500、2500 ng/ml,分别加入1 ml新鲜制 备的Hoechst33258溶液(400 ng/ml),混合均匀后, 测量各组溶液的荧光强度,绘制DNA浓度标准曲 线。 ? 取上述第三、四步骤中离心管的上清液并加入 1 ml新鲜制备的Hoechst 33258溶液。混合均匀后, 在相同条件下测量荧光值。DNA和蛋白质交联率 计算公式:DNA-蛋白质交联率=交联DNA含量/ (交联DNA含量+游离DNA含量)。 ? 实验结果数据采用均数ⱦ 准差(xⱳ)表达,采 用SPSS 13.0统计软件进行分析,计数数据用卡方检验,计量数据用方差分析(ANVOA)进行比较。 ? 大鼠肺组织内8-OHdG含量 的影响 ? 由于臭氧具有强氧化性,8-OHdG是DNA氧化损伤的产物,通常检测8-OHdG的含量可以反映出 DNA氧化损伤程度。随着臭氧浓度的升高,肺组织 内8-OHdG的含量逐渐升高,0.12 ppm、0.5 ppm、1.0 ppm、2.0 ppm及4.0 ppm臭氧暴露组与对照组相比 均有显著性差异,且在臭氧浓度为4.0 ppm时达到 最大值(P<0.05)。 ? 荧光显微镜下观察,对照组未见拖尾的细胞,只 有完整的头部,表明细胞未发生DNA断裂;臭氧暴 露组均可观察到拖尾的细胞,断裂的DNA游动移出细胞核外,形成尾部,形似彗星。 ? 采用软件分 析图片显示,随着臭氧浓度的增大,0.12 ppm、0.5 ppm、1.0 ppm、2.0 ppm及4.0 ppm暴露组的拖尾数 量及拖尾长度均显著升高(P<0.05)。 ? 大鼠肺部细胞内DNA-蛋白质交联率的变化 ? DNA-蛋白质交联(DNA-protein crosslink,DPC)是指DNA链通过共价键的作用与蛋白质稳定的结 合在一起,是一种较为严重的DNA损伤形式。 ? 与对照组相比,0.12 ppm、0.5 ppm、1.0 ppm、2.0 ppm及4.0 ppm臭氧暴露组大鼠肺部细胞内DNA-蛋白质交 联率均显著性增加(P<0.05),且在2.0 ppm时达到最大值。 ? 急性臭氧暴露对肺部细胞染色体水平的影响 0.12 ppm、0.5 ppm、1.0 ppm、2.0 ppm及4.0 ppm 臭氧暴露组大鼠肺部细胞微核率分别为1.4‰,1. 6‰,2.0‰,2.4‰,3.0‰和3.2‰,微核率的发生与对照组相比均无统计学差异(P>0.05),但均随着臭 氧浓度的升高,微核的发生率增加。 ? 结论 ? 综上所述,急性臭氧暴露对大鼠遗传毒性的影 响,在DNA断裂方面,臭氧浓度越大,断裂损伤越 大,而DNA-蛋白质交联方面,随着臭氧浓度的变化, 出现先升高后下降的趋势。所以,臭氧致肺细胞遗 传毒性方面,不同的水平进行分开检测与描述。
实验室毒物大揭秘! 实验室里,那些看似神奇的化学试剂,其实隐藏着不小的危险。今天,我们就来聊聊那些让人闻风丧胆的有毒试剂。 DMSO(二甲基亚砜)ꊄMSO常用于冻存液的配置,也是许多粉剂的溶剂。然而,它具有血管毒性和肝肾毒性,使用时一定要小心。 EB(溴化乙锭)슅B是琼脂糖凝胶电泳中的核酸染料,具有致癌性。在我们学校的仪器平台,使用EB时甚至不允许显影,因其毒性极强。 PCR实验中的有毒试剂CR实验中使用的苯、二甲苯、酚、trizol、氯仿等有机溶剂都有致癌风险。DEPC(焦炭酸二乙酯)用于溶解RNA,是潜在的蛋白质变质剂。进行PCR实验时一定要戴好口罩。 WB实验中的危险试剂ꊗB实验中使用的PMSF用于蛋白提取,具有高强度毒性;SDS(十二烷基硫酸钠)用于SDS-PAGE电泳凝胶配置,具有刺激作用,可能引起呼吸系统过敏性反应;丙烯酰胺(未聚合)作为蛋白电泳凝胶原料,具有潜在神经毒性;TEMED(四甲基乙二胺)用于SDS-PAGE凝胶配置,能催化凝胶凝固,易挥发,且具有强神经毒性。 Triton x-100riton x-100具有刺激性,可能因吸入或者皮肤吸收而使人受害。 多聚甲醛ꊥ䚨甲醛应用于组织固定灌流,易挥发且属于剧毒物质。 DTT (二硫苏糖醇)ꊄTT是一种小分子有机还原剂,会散发出难闻的气味。可能因吸入、咽下或者皮肤吸收而危害健康。 吉姆萨 Giemsaꊥ姆萨染料毒性极强,可能致命或者导致眼睛失明,能够通过吸入和皮肤吸收进入人体,其可能造成的危险具有不可逆的效应。 过硫酸铵APSꊨ🇧 𘩓黏膜和上呼吸道组织、眼睛和皮肤具有极大的危害性。吸入甚至可能致命。 甲醇𗊧有毒性,致命剂量约为70毫升。甲醇的毒性对人体的神经系统和血液系统影响最为显著,不论是经消化道、呼吸道还是皮肤摄入,都会产生毒性反应。甲醇蒸汽会损害人的呼吸道粘膜和视力。因此,要佩戴好防毒面具和护目镜,避免接触其蒸汽,并注意在通风橱内进行操作。 乙醚ꊤ是一种高度挥发,遇明火、高热极易燃烧爆炸,并具有特殊气味的液体。其化学性质不稳定,在日光下与空气接触,易形成爆炸性过氧化物过氧化乙醚。使用时应倍加小心。乙醚广泛用作麻醉剂。 进入实验室时,一定要严格遵守安全规定,戴好防护用具,手套、护目镜一个都不能少!生命只有一次,千万不能掉以轻心!让我们一起远离危险,保护好自己!
짻胞生物学实验全攻略슰探索细胞世界的奥秘,从显微镜的使用开始!슊验一:普通光学显微镜的构造与使用 - 了解显微镜的原理:光的折射与放大。 - 掌握显微镜的主要部件:目镜、物镜等。 - 学习如何调整焦距,获得清晰的物像。 验二:油镜的使用技巧 - 学会在高倍镜下观察后,如何使用油镜进行更精细的观察。 - 注意油镜使用的注意事项,避免损坏镜头。 验三:染色体形态观察 - 在低倍镜下选择染色体分散良好的细胞。 - 观察染色体的形态、大小及着丝粒的位置。 - 区分不同类型的染色体,如端着丝粒、亚端着丝粒等。 验四:G-显带技术原理 - 了解Giemsa染料如何使染色体出现亮暗相间的带纹。 - 观察DNA上高比例二硫键的氧化态蛋白质区域与还原态蛋白质区域的差异。 验五:银染装片与G带观察 - 学习银染装片的制作方法。 - 观察银染后的染色体带型特征,了解G带的分布与形态。 쩀过这些实验,你将更深入地了解细胞生物学的奥秘,掌握显微镜使用与染色体形态观察的关键技能!
铀矿尘对支气管上皮细胞遗传毒性及茶多酚有着怎样的防护作用? ? 前言 ? 流行病学调查显示:接触铀矿尘职业人群主要 见于铀矿的开采、选矿、精铀提取等有关核燃料的生产过程。铀矿尘是铀矿勘探和开采的主要职业性有害因素,铀矿尘的组成除了非放射性的二氧化硅粉尘外,还包括放射性粉尘和凝聚核。 ? 铀矿粉尘可通过呼吸道进入人体后形成内辐射,引发损伤。通过对铀作业人员的健康随访研究表明,长期接触铀矿尘与矽肺、肺癌等多种疾病的发生率增高有关。 ? 细胞分组及其染毒 ? 人支气管上皮细胞(BEAS-2B),购自美国ATCC(American Type Culture Collection)。铀矿尘(南华大学核工业铀矿溶浸采矿重点实验室,铀的含量为 4.52‰)用玛瑙研钵研磨后,经 500 目筛过筛,高温高压消毒后用无血清培养液(LHC-8)配成 5 mg/mL 混悬液。 ? 将指数生长期细胞分为空白对照组、铀矿尘染毒组和茶多酚保护组。铀矿尘染毒 组按铀矿尘终浓度 1.0、1.5、2.0 mg/mL 加入细胞中; 茶多酚保护组在铀矿尘染毒前 2 h 加入终浓度为 250 mg/L 的茶多酚。 ? 中性单细胞凝胶电泳实验 ? 实验分组与染毒同上,染毒24 h 后,收集细胞制成悬液;取 100 1%正常熔点琼脂糖滴至磨砂玻片上,4℃冷却 10 min;取 10 5㗱05 /mL 细胞悬液与 60 低熔点的琼脂糖混匀滴在第一层琼脂 糖上,4℃冷却 10 min;在第二层上再滴上 60 低熔点的琼脂糖,放于 4℃冷却 10 min;将玻片放入 4℃细胞裂解液中裂解 2 h;用 0.5% TBE(pH8.2- 8.5)漂洗 3 次,每次 1 h。 ? 玻片置于中性缓冲液中, 4℃电泳 30 min(25 V,5 mA); PI 染色 15 min, OLYMPUS 荧光显微镜绿色激发光下观察并拍照; 用 CASP. EXE 软件分析彗星细胞,分析尾长、尾部 DNA 百分含量、尾距。每组分析200 个细胞,重复4 次。 ? HPRT 基因突变检测 ? 细胞分组及染毒同上,铀矿尘染毒 24 h 后,用 预温的 D-Hanks液洗涤 3 次,立即换新鲜的培养液继续培养。上述染毒后的细胞培养至第 5 代时,每组细胞分为两组,一组加入含终浓度为 0.1 mmol/L 6-巯基鸟嘌呤(6-TG,Sigma)的 LHC-8 培养液,37℃培养 30 h。 ? 同时向两组加入 6 /mL 的细胞松弛素 B(Cytochalasin B,Calbiochem),继续培养 42 h;胰蛋白酶消化,制备细胞悬液,甲醇/冰醋酸 (3∶1);细胞悬液滴片,Giemsa 染色,干燥后,在光镜下计数5000个细胞,记录在同一胞浆内具有完整核膜的双核或多核细胞(包括相压、相切和 分离的双核或多核细胞数)。 ? 含有 6-TG 培养细胞 中的 1000 个细胞中双核或多核细胞数除以不含 6-TG 培养的 1 000 个细胞中双核或多核细胞数,所 得结果为 HPRT 基因位点突变频率(‰),每组重复4次。 ? 铀矿尘诱发BEAS-2B细胞DNA损伤及茶多酚的抑制作用 ? 经不同剂量的铀矿尘染毒的BEAS-2B细胞彗星测定可以看出,各铀矿尘组拖 尾细胞数量、尾部 DNA 百分比、尾长、尾距都较 对照组明显增加,并随着铀矿尘浓度的增高,这些 指标不断增高,表明铀矿尘可造成细胞的 DNA 损 伤。而茶多酚对各剂量铀矿尘诱发的 BEAS-2B 细 胞 DNA 损伤都有明显抑制作用(p<0.05)。 ? 随着铀矿尘剂量浓度的增 高,BEAS-2B 细胞中的微核细胞、多核细胞增多,表明铀矿尘对细胞染色质损伤加重,茶多酚对铀矿 尘所诱发的微核及多核细胞增多有较好的抑制作用。 ? 结论 ? 铀矿尘通过呼吸道进入人体,它对人体造成的危害主要是由于粉尘在肺泡、支气管等表面的沉积 以及所含放射性物质的辐射所引起。 ? 放射性粉尘长 时间滞留于肺气管、支气管和淋巴结内,可构成潜在的内照射危害。在对湖南某铀矿矿工 655 例死亡原因的调查中,肺癌的标化死亡比为 2.29,且死亡数大于矽肺死亡例数。 ? 铀矿尘中 射线具有直 接损伤 DNA 的能力,也可通过产生包括活性氧 (ROS)在内的多种自由基的间接作用造成 DNA 氧化损伤。
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