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trizol试剂新上映_trizol溶液(2024年12月抢先看)

内容来源:卡姆驱动平台所属栏目:导读更新日期:2024-12-02

trizol试剂

科研神器!Trizol试剂 𐟔젔rizol的优势在于其独特的作用机制和强大的效果。它能快速裂解细胞并稳定RNA,防止RNA酶降解。 𐟧ꠦŽ訍理由:这款试剂适用于多种样本类型,能有效提取高质量的RNA,为你的科研工作提供强有力的支持。无论是基因表达研究、差异基因组学分析还是基因功能分析等实验,Trizol都是不可或缺的科研好物。 𐟓– 如果你发现试剂盒提取的RNA浓度较低,可以在最后一步溶解时少加一些水,这样效果会更好哦!

RNA提取秘籍:从细胞到纯净 𐟔 原理简介: RNA提取的过程包括样品的裂解和纯化。裂解是为了让RNA从细胞或组织中释放出来,而纯化则是为了去除RNA之外的杂质,如DNA、蛋白质等。Trizol是一种强大的工具,可以直接从细胞或组织中提取总RNA。 𐟓 步骤详解: 1️⃣ 细胞清洗: 吸去培养液,用PBS清洗细胞2-3次。以6孔板为例,每孔加入1ml Trizol,室温放置5分钟,让细胞充分裂解。 2️⃣ 裂解与分层: 将细胞/组织裂解液转移到离心管中,每管加入200ul氯仿,振荡混匀后,室温静置2-3分钟,让Trizol与氯仿分层。 3️⃣ 离心分离: 将离心管放入预冷的离心机,4℃下以12000rpm离心15分钟。离心后,溶液分为三层:下层为粉红色的Trizol,中间为蛋白和细胞碎片,上层为清亮的氯仿层。 4️⃣ 提取RNA: 取新的离心管,加入500ul异丙醇,将上层RNA转移到含异丙醇的离心管中。用200ul枪头缓慢提取上层RNA溶液,避免吸取到中间层及下层液体。 5️⃣ 离心胶状物: 颠倒离心管混匀后,室温静置10分钟,再以4℃ 12000rpm离心10分钟。离心后,RNA会在管底部和侧壁上形成胶状沉淀块。 6️⃣ 清洗RNA: 移去上清液,每1ml Trizol试剂裂解的样品中加入至少1ml的75%乙醇(75%乙醇用DEPC水配制),清洗RNA沉淀。混匀后,4℃ 7500rpm离心5分钟,吸去乙醇溶液,再次离心,吸去残留的乙醇。 7️⃣ 干燥RNA: 让RNA沉淀在室温空气中干燥5-10分钟,直到从白色变为透明。 8️⃣ 溶解RNA: 根据RNA的量加入20-40的无RNA酶水,反复吹打使其完全溶解,保存于-80℃待用。 𐟒ᠦ示: 在整个提取过程中,要特别注意避免RNA酶的污染,以确保RNA的完整性和纯度。

Trizol法提RNA,超全攻略! 𐟌ˆ 实验原理: Trizol试剂的主要成分是苯酚,它能有效裂解细胞,使细胞中的蛋白质和核酸物质解聚。尽管苯酚能使蛋白质变性,但它不能完全抑制RNA酶的活性。因此,Trizol中还加入了8-羟基喹啉、异硫氰酸胍、B-巯基乙醇等来抑制内源和外源RNase(即RNA酶)。存放在Trizol中的样品可以在-80Ⰳ保存半年左右。 𐟔젦 𗦜쥤„理方法: 贴壁培养细胞 吸出培养液,用预冷的1xPBS清洗细胞两次。 吸出PBS洗液,然后每1㗱08-2㗱07的培养细胞中加入1ml的Trizol,轻摇培养皿,确保溶液均匀分布于细胞表面。(可用细胞刮刀剥离细胞) 使用移液器反复吹打使细胞脱落,然后将内含细胞的裂解液转移至离心管中,再用移液器吹打直至裂解液中无明显沉淀(溶液清亮)。 室温静置5-10分钟后,再进行后续的RNA提取操作。 悬浮培养细胞 将悬浮细胞收集至离心管中,12000 rpm 4Ⰳ离心2分钟,弃上清,用预冷的1xPBS清洗两次。 向1x106-2㗱07细胞中加入1ml的Trizol。 用移液器吹打至裂解液清亮无明显沉淀。 室温静置5-10分钟后,再进行后续的RNA提取操作。 动物组织、植物材料样品 将准确称取的RNA提取样品转移至液氮预冷的研钵中,用研杵研磨组织(研磨过程中需要不断向研钵中补加液氮),直至研磨成粉末状,然后向粉末中加入适量的Trizol并混匀。(针对柔软易裂解的组织样本,可以使用匀浆器加入适量Trizol进行匀浆裂解) 将上述混合液转移至离心管中,用移液器反复吹打充分混匀。室温静置5分钟,12000 rpm 4Ⰳ离心5-10分钟。 小心吸取上清液,移入新的离心管中,再进行后续的RNA提取操作。 通过以上步骤,您可以使用Trizol法成功提取RNA,为后续的实验研究提供可靠的样本。

核糖核酸2 在日常实验和送测序中,我们经常听到mRNA和microRNA这两个词,但它们到底有什么区别呢?更重要的是,它们都能用RNA提取试剂盒提取吗? mRNA和microRNA的区别 𐟓– 首先,mRNA(信使RNA)是蛋白质合成的直接模板。它的分子通常很长,由数千个核苷酸组成。在核糖体上,mRNA的信息被用来合成特定的蛋白质,这个过程叫做翻译。 而microRNA(微小RNA)则是一种小分子非编码RNA,分子较短,通常由约22个核苷酸组成。它可以与mRNA的3'非翻译区(3'UTR)或其他区域结合,从而调控基因表达。换句话说,microRNA通过调控mRNA的稳定性和翻译来间接影响蛋白质的合成。 提取mRNA和microRNA的试剂盒 𐟧ꊊ要提取mRNA,你应该使用Trizol或者总RNA提取试剂盒。而要提取microRNA,则需要使用专门的microRNA提取试剂盒。全转录组测序通常选择microRNA提取试剂盒,而普通转录组测序则可以选择总RNA提取试剂盒或者Trizol。 小结 𐟓 总的来说,mRNA是蛋白质合成的直接模板,而microRNA则通过调控mRNA的稳定性和翻译来间接影响蛋白质的合成。在提取RNA时,选择合适的试剂盒非常重要,以确保实验结果的准确性。

Trizol法提取RNA的详细步骤和原理 Trizol法,也称为异硫氰酸胍-苯酚法,是最经典且广泛使用的RNA提取方法之一。这个方法的核心是使用强变性剂异硫氰酸胍来裂解细胞,并使核蛋白复合体中的蛋白质变性。在特定的pH条件下,由于DNA和RNA的溶解度不同,它们会被分离。DNA位于中间相,而RNA则位于水相。通过有机溶剂沉淀RNA,可以得到纯度较高的RNA。 RNA提取步骤 准备试剂 首先,准备好以下试剂:氯仿、异丙醇、75%乙醇和无RNase的水或0.5%SDS(所有溶液都需要用DEPC处理过的水配制)。 匀浆处理 组织:将组织在液氮中磨碎,每50-100mg组织加入1ml Trizol,用匀浆仪进行匀浆处理。样品体积不应超过Trizol体积的10%。 单层培养细胞:直接在培养板中加入Trizol裂解细胞,每10cmⲩ⧧ﯼˆ即3.5cm直径的培养板)加1ml,用移液器吸打几次。Trizol的用量应根据培养板面积而定,不取决于细胞数。Trizol加量不足可能导致提取的RNA有DNA污染。 细胞悬液:离心收集细胞,每5-10㗱0⁶动物、植物、酵母细胞或1㗱0⁷细菌细胞加入1ml Trizol,反复吸打。加Trizol之前不要洗涤细胞以免mRNA降解。一些酵母和细菌细胞需用匀浆仪处理。 分离核酸蛋白复合物 将匀浆样品在室温(15-30℃)放置5分钟,使核酸蛋白复合物完全分离。 可选步骤 如果样品中含有较多蛋白质、脂肪、多糖或胞外物质(如肌肉、植物结节部分等),可以在2-8℃下以10000㗧离心10分钟,取上清。离心得到的沉淀中包括细胞外膜、多糖、高分子量DNA,上清中含有RNA。处理脂肪组织时,上层有大量油脂应去除。取澄清的匀浆液进行下一步操作。 氯仿萃取 每使用1ml Trizol加入0.2ml氯仿,剧烈振荡15秒,室温放置3分钟。 离心分离 在2-8℃下以10000㗧离心15分钟。样品分为三层:底层为黄色有机相,上层为无色水相和一个中间层。RNA主要在水相中,水相体积约为所用Trizol试剂的60%。 沉淀RNA 把水相转移到新管中,如要分离DNA和蛋白质可保留有机相,进一步操作见后。用异丙醇沉淀水相中的RNA。每使用1ml Trizol加入0.5ml异丙醇,室温放置10分钟。 离心收集RNA 在2-8℃下以10000㗧离心10分钟,离心前看不出RNA沉淀,离心后在管侧和管底出现胶状沉淀。移去上清。 洗涤RNA沉淀 用75%乙醇洗涤RNA沉淀。每使用1ml Trizol至少加1ml 75%乙醇。在2-8℃下不超过7500㗧离心5分钟,弃上清。 干燥RNA沉淀 室温放置干燥或真空抽干RNA沉淀,大约晾5-10分钟即可。不要真空离心干燥,过于干燥会导致RNA的溶解性大大降低。加入25-200无RNase的水或0.5%SDS,用枪头吸打几次,55-60℃放置10分钟使RNA溶解。如RNA用于酶切反应,勿使用SDS。

Trizol法提RNA,纯度巅峰! 在基因表达量分析或构建cDNA文库时,从组织或细胞中提取纯度高、完整性好的RNA至关重要。Trizol法是最经典且常见的RNA提取方法。以下是其基本原理和详细步骤。 基本原理 𐟧슔rizol法,即异硫氰酸胍-苯酚法,利用强变性剂异硫氰酸胍使细胞裂解,并使核蛋白复合体中的蛋白变性。在特定pH条件下,DNA和RNA的溶解度不同,从而分离。DNA位于中间相,RNA位于水相,再通过有机溶剂沉淀RNA,即可获得纯度较高的RNA。 RNA提取步骤 𐟓 准备试剂:氯仿、异丙醇、75%乙醇、无RNase的水或0.5%SDS(溶液均需用DEPC处理过的水配制)。 匀浆处理: 组织:将组织在液氮中磨碎,每50-100mg组织加入1ml Trizol,用匀浆仪进行匀浆处理。样品体积不应超过Trizol体积的10%。 单层培养细胞:直接在培养板中加入Trizol裂解细胞,每10cmⲩ⧧ﯼˆ即3.5cm直径的培养板)加1ml,用移液器吸打几次。Trizol的用量应根据培养板面积而定,不取决于细胞数。Trizol加量不足可能导致提取的RNA有DNA污染。 细胞悬液:离心收集细胞,每5-10㗱0⁶动物、植物、酵母细胞或1㗱0⁷细菌细胞加入1ml Trizol,反复吸打。加Trizol之前不要洗涤细胞以免mRNA降解。一些酵母和细菌细胞需用匀浆仪处理。 分离核酸蛋白复合物:将匀浆样品在室温(15-30℃)放置5分钟,使核酸蛋白复合物完全分离。 可选步骤:如样品中含有较多蛋白质、脂肪、多糖或胞外物质(肌肉、植物结节部分等),可于2-8℃10000㗧离心10分钟,取上清。离心得到的沉淀中包括细胞外膜、多糖、高分子量DNA,上清中含有RNA。处理脂肪组织时,上层有大量油脂应去除。取澄清的匀浆液进行下一步操作。 氯仿萃取:每使用1ml Trizol加入0.2ml氯仿,剧烈振荡15秒,室温放置3分钟。 离心分离:2-8℃10000㗧离心15分钟。样品分为三层:底层为黄色有机相,上层为无色水相和一个中间层。RNA主要在水相中,水相体积约为所用Trizol试剂的60%。 通过以上步骤,您可以获得纯度高、完整性好的RNA,为后续的实验打下坚实基础。

RNA提取指南:TRIzol法详解 RNA提取是一个重要的实验室步骤,用于获取细胞和组织中的RNA。这里我们将详细介绍使用TRIzol提取法的步骤,这是一种广泛使用的RNA提取方法。 取样和研磨 𐟧ꊩ斥…ˆ,迅速取出组织样本,使用电子天平称重约0.3-0.5克(也可以根据经验估算)。将组织放入液氮预冷的研钵中,边研磨边加入液氮,确保组织在整个过程中不会融化。 裂解组织 𐟌€ 对于组织:按每100毫克组织加入1毫升TRIzol,继续研磨至较细粉末,将组织裂解液转移到1.5毫升离心管中,每管约1毫升,室温放置15分钟以上。也可以直接将研磨的较细粉末用枪头刮入已取好的含有1毫升TRIzol的1.5毫升离心管中,4℃放置10分钟,或室温放置15分钟以上。 对于细胞:悬浮细胞需预处理,4℃,3000rpm离心10分钟,收集细胞沉淀于1.5毫升离心管底。弃去培养液,加入适量1xPBS洗一次,弃去1xPBS,加入1毫升TRIzol试剂(TRIzol加入量基于细胞数(1毫升/0.5-1x107个)或培养瓶的面积(1毫升/10cmⲯ𜉯𜌧”觧𛦶𒥙訽𛥐𙦉“几次,超净台中室温放置15分钟以上,转移1毫升液体到1.5毫升离心管中。 抽提 𐟌Š 按0.2毫升氯仿/1毫升TRIzol的比例加入氯仿,vortex 30秒或用手剧烈摇动15秒,室温放置2-3分钟后,4℃,12000rpm离心15分钟。小心转移上清到一新的1.5毫升离心管中,不要吸取中间层。 沉淀 𐟌🊦Œ‰异丙醇/上清=1:1的比例加入异丙醇,上下颠倒混匀,-20℃放置30分钟后,4℃,12000rpm离心15分钟。弃上清,异丙醇不要回流过多,可再短暂离心,用移液器将剩余的异丙醇吸出。 漂洗 𐟒犥Š 入1毫升75%乙醇,用手指将沉淀块弹起,上下颠倒几次,4℃,12000rpm离心5分钟。弃上清,75%乙醇不要回流过多,可再短暂离心,用移液器将剩余的75%乙醇吸出。 风干和溶解 𐟌쯸 在超净台中自然干燥5-10分钟,不要真空离心干燥。RNA不要完全干透,以防不能完全溶解。用DEPC水溶解RNA,60-65℃助溶5-10分钟。 定量 𐟓 进行Total RNA定量,如果不马上定量,将样品贮存于-80℃。 通过以上步骤,你就可以成功提取RNA啦!记得在实验过程中保持无菌操作,以确保RNA的质量。

实验室有毒试剂清单|珍爱生命,远离实验 昨天在实验室搞多聚甲醛的时候,没在通风橱里操作,结果今早起来头巨痛!真是教训啊,大家做实验一定要戴好口罩,做好防护!立马整理了一下实验室里的有毒试剂,绝不做实验室的牺牲品! DMSO(二甲基亚砜)𐟧ꊨ🙤𘪤𘜨忧”褺Ž冻存液的配置,还有作为常见粉剂的溶剂。但它有血管毒性和肝肾毒性,小心为上! EB(溴化乙锭)𐟒€ EB用于琼脂糖凝胶电泳的核酸染料,剧毒!我们学校仪器平台都不让用EB显影,致癌性很强,大家一定要小心。 PCR实验𐟧슥šPCR实验的时候,苯、二甲苯、酚、trizol、氯仿这些有机溶剂都是致癌的。还有DEPC(焦炭酸二乙酯),用于溶解RNA,但它是潜在的蛋白质变质剂。做PCR一定要戴好口罩! WB实验𐟓Š WB实验中,PMSF用于蛋白提取,高强度毒性;SDS(十二烷基硫酸钠)用于SDS-PAGE电泳凝胶配置,有刺激作用,可能引起呼吸系统过敏性反应;丙烯酰胺(未聚合)是蛋白电泳凝胶原料,有潜在神经毒性;TEMED(四甲基乙二胺)用于SDS-PAGE凝胶配置,催化凝胶凝固,但易挥发,强神经毒性。 Triton x-100𐟧𔊨🙤𘪤𘜨忦œ‰刺激性,可以因吸入或皮肤吸收受害,大家要小心。 多聚甲醛𐟕𕯸‍♂️ 多聚甲醛用于组织固定灌流,易挥发且剧毒。昨天我就是因为这个倒霉东西头才这么痛的。 DTT (二硫苏糖醇)𐟧ꊥ𐏥ˆ†子有机还原剂,散发出难闻的气味。可以因吸入、咽下或皮肤吸收而危害健康。 吉姆萨 Giemsa𐟦  吉姆萨染料有极强的毒性,可致命或引起眼睛失明。可以通过吸入和皮肤吸收,其可能的危险是不可逆的效应。 过硫酸铵 APS𐟒动🇧᫩…𘩓𕥯𙩻膜和上呼吸道组织、眼睛和皮肤有极大危害性。吸入可致命。 甲醇𐟍𖊧”𒩆‡有毒,致命剂量大约是70毫升。甲醇的毒性对人体的神经系统和血液系统影响最大。它经消化道、呼吸道或皮肤摄入都会产生毒性反应,甲醇蒸汽能损害人的呼吸道粘膜和视力。佩戴好防毒面具和护目镜,避免接触其蒸汽,注意在通风橱内操作。 乙醚𐟔劤𙙩†š高度挥发,遇明火、高热极易燃烧爆炸,并有特殊气味。化学性质不稳定,日光下去空气接触,易形成爆炸性过氧化物过氧化乙醚。应小心使用。广泛用作麻醉剂。 希望大家在做实验的时候一定要注意安全,珍爱生命!

circRNA实验全解 𐟔 实验原理 在组织或细胞中提取的total RNA通常包含多种RNA。为了准确分析circRNA,首先需要去除样本中的核糖体RNA和poly-A RNA干扰,然后用RNase酶消化掉线性RNA,从而使circRNA富集。 𐟓Š 实验目的 从总RNA中富集circRNA,采用Northern blot和特异的PCR进行验证,并对circRNA的成环特性进行评估。 𐟧ꠥꌦ料 RNA提取试剂盒 核糖体RNA去除试剂盒 PolyA结合磁珠 RNAaseR试剂盒 放线菌素D Northern blot试剂盒 发散引物RT-PCR 𐟓 实验步骤 4.1 RNA提取 样品处理 组织样品:加入400ul Trizol溶液到装有绿豆大小组织块的EP管中,利用电动组织匀浆器在冰上充分匀浆1-2min,后放置室温充分裂解10min。 细胞样品:12孔板细胞弃去上清,每孔加入600ul Trizol溶液。先在冰上裂解15-20min,再用1ml移液枪吹打液体充分裂解贴壁细胞,后将液体转移到RNasefree EP管中。 RNA提取 按1:5比例,在Trizol溶液中加入氯仿,手动充分摇匀混合液20-30s,室温放置10min。 4度1200g离心10min,小心转移上层透明液体到EP管中。 按异丙醇与Trizol溶液比例为1:2加入异丙醇,上下颠倒混匀液体,室温放置10-15min。 4度1200g离心10min,弃去上清,可见羽毛状RNA沉淀于管侧底部。按等比例加入75%乙醇,温和地悬浮RNA沉淀。 4度7500g离心5min,尽量吸除上清,室温晾干5-10min。用20ul RNase free dH20溶解RNA,测浓度后-80度保存。 总RNA定量 RNA在260nm波长处有最大吸收峰,可通过测定RNA样品的OD260和OD280估算出RNA的含量和纯度。OD260值为1相当于40ug/ml单链RNA,该方法提取的RNA OD260/280值在0.8-2之间。 circRNA的预处理 去除核糖体RNA和poly-A RNA 使用Invitrogen的核糖体RNA去除试剂盒RiboMinusTM Human/Mouse Transcriptome Isolation Kit(货号K1550-01)。 通过磁珠法结合Poly(A)的RNA后剩余的RNA即为Poly(A)-RNA样品。 RNAaseR酶消化 RNase R是一类核糖核酸外切酶,能降解大部分线性RNA,但circRNA不易被RNase R酶消化降解。因此可以通过该实验鉴别circRNA和线性RNA。 准备总RNA样品:提取细胞或组织的总RNA,测浓度后备用。 RNaseR反应体系:取5ug total RNA样品按下面体系准备消化。 短暂旋转试管,添加5xFirst-StrandBuffer, 0.1MDTT, RNasin和SuperScriptM RT,轻轻移液并将反应液在25℃下孵育5分钟。 在50℃下孵育60分钟,然后通过灭活反应在70℃加热15分钟。 发散引物可以扩增circRNA,而不能扩增线性RNA。 𐟓š 参考文献 Chen et al. (2015). Isolation of non-polyadenylated and ribosomal-free RNAs from mammalian cells. Methods Mol Biol 1206, 69-80. Yang et al. (2016). Characterization of Circular RNA. Methods Mol Biol 1402, 215-227.

不跑电泳就谈RNA质量?那都是瞎扯! 有些人啊,真是让人无语,不跑电泳就敢谈RNA质量的好坏,简直是耍流氓!𐟘䠤𘺤𛀤𙈨🙤𙈨ﴥ‘⯼Ÿ因为很多仪器,比如NarnoDorp2000,根本没法区分DNA和RNA。换句话说,就算你的RNA完全降解了,这种仪器也能读出高纯的OD比值和高浓度数据。所以啊,仪器数据在RNA电泳图合格的前提下才有参考意义! Trizol沉淀法:看28:18s比例 首先,咱们来说说Trizol沉淀法。这种方法提取的RNA,28:18s的比例至少得是1.5:1。为啥呢?因为用异丙醇或乙醇沉淀的时候,5s的小片段也会一起沉淀下来。所以,如果看到明显的5s条带,那其实是正常的,不提示降解。 RNA吸附柱法:两个标准 接下来是RNA吸附柱法。这个方法有两个判断标准: 28s:18s=2:1 这个标准的意思是,28s和18s的条带要清晰,尤其是亮度。28S比18s越亮越好。为啥呢?因为降解总是从大片段开始,从28s降解到18s,最后降解到5s。如果最容易降解的28s都没有降解,那就可以推理出mRNA是完好的。 5s带不出现 第二个标准是5s带不出现。总RNA包括mRNA、tRNA和rRNA。虽然现在大家都默认总RNA提取试剂盒只对mRNA、tRNA、rRNA负责,但实际情况是,这些试剂盒只提出来的是这三种RNA的混合物,重点是对mRNA负责。所以,各大公司的总RNA提取试剂盒案例所配的RNA电泳图,只有代表“总RNA”的2条带——28s和18s;代表microRNA的5s带,要不没有,要不很弱。 电泳图解析 看看这几个电泳图吧: 泳道2:完全正常的RNA——28s:18s比例大约是2:1,5s位置也基本见不到带。这就说明完全正常,无降解。 泳道3,4:完全降解了——28s和18s已经基本降解光了。两条带都看不见了。最后降解成的小片段正好和5s大小一致,所以在5s位置看到了大量的一条浓浓的降解小片段。 泳道1,5,6,7,8,9:部分降解了——28s是RNA大片段,更容易降解,所以28s首先降解,表现为28s条带变淡,18s条带明显变粗,造成28s:18s的比例竟然小于1了。然后在不该看到条带或者应该是很弱的5s位置,出现了较明显的5s大小的降解带。 总之,不跑电泳就谈RNA质量好坏,那都是瞎扯!𐟘䠥𘌦œ›大家都能通过正规的电泳图来判断RNA的质量,别被那些不靠谱的说法忽悠了!

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