细胞转染最新视觉报道_细胞转染原理(2024年11月全程跟踪)
上一期内容介绍了如何构建质粒,然而成功构建质粒只是踏出了基因表达调控的第一步,要成功调控基因表达,还需要将质粒高效的递送到细胞内。本期小编将向大家介绍如何将质粒转染进宿主细胞。 广义上讲,转染是利用病毒感染以外的方式人工将核酸(DNA或RNA)导入细胞的过程。经过转染后,导入的核酸游离在细胞核中,可转录表达而不进行复制,也有极小部分会整合到受体细胞的基因组中,随宿主基因组一同复制。 作为最常见的转染载体,质粒DNA含有重组基因和调控元件,可以转染到细胞中,用于基因表达调控,研究基因的功能、基因产物的突变分析和生化表征以及基因表达对细胞健康和生命周期的影响。对哺乳动物细胞转染来说,除了合适的载体,转染方法和转染试剂对转染的成功率也起到决定性作用。 「汉恒生物」「科研」「质粒转染」「质粒构建」
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质粒提取常见问题解答 在质粒提取过程中,我们可能会遇到各种问题。以下是一些常见问题的解答: 如何确定质粒小抽的细胞用量?⬇️ 在一般的载体构建实验中,几微克的DNA就足够了。因此,小提5ml菌液通常能满足需求。如果使用过多的细胞,由于试剂盒的限制,可能会导致菌液难以裂解,而且DNA的纯度和得率也不会显著提高。对于需要大量质粒的情况,可以考虑更换提取试剂盒或按比例增加各溶液的用量。 电泳分析抽提的质粒会看到什么? 如果质粒的纯度很差,电泳加样孔往下看到的条带依次是基因组DNA、开环环状质粒、超螺旋质粒、变性的超螺旋质粒和细菌RNA。高质量的质粒胶图主要部分为超螺旋质粒,没有RNA等污染。 质粒制备的得率由哪些因素决定?𑊨𒒧得率受多种因素影响,包括宿主细胞类型、大肠杆菌的数量、质粒的拷贝数和提取过程中使用的纯化方式(试剂盒类型)。 质粒需要什么样的纯度? 对于一般的载体构建和测序检测,手工和试剂盒制备的DNA就能达到要求。但如果质粒用于细胞转染实验,则需要无热源、无内毒素的质粒。 为什么酶切鉴定“有插入片段”的质粒测序却发现是空的?✂️ 主要原因是在提取质粒的过程中产生了变性的超螺旋质粒,限制性内切酶无法对其进行酶切。因此在判断酶切效果时,变性的超螺旋质粒常被误认为是酶切下来的片段,从而导致误判。可以通过在酶切后的电泳分析中增加一个原始质粒进行对照来避免误判。 如何判定DNA的纯度和浓度? 使用试剂盒抽提的质粒DNA,可以通过仪器检测OD260和OD280浓度,通常OD260/OD280的比值在1.7-1.8之间。1 OD260=50/ml。如果要估算质粒浓度,建议通过琼脂糖电泳来判断会更准确一些。 为什么有些纯化的质粒时间长了会发生降解?⏳ 主要原因可能是核酸酶的污染。除了在质粒提取过程中带入核酸酶外,质粒宿主细胞的种类也会影响到抽提质粒的质量。如果提取的质粒需要长期保存,可以使用内含丰富核酸酶活性的大肠杆菌,如DH5DH1等。
实验室“打工人”必备高级仪器中英文名 쥜襮验室里,科研人员需要使用各种仪器设备来完成实验。今天我们整理了一些高级实验室仪器设备的中英文名称,虽然它们的使用频率可能不如试剂和耗材高,但同样不可或缺! 自动移液器:Automated liquid handler 原子吸收光谱仪:Atomic absorption spectrometer 96孔分离器:96-well separator 毛细管电泳系统:Capillary electrophoresis system 4D-细胞核转染系统:4D-Nucleofector system 自动细胞计数仪:Automated cell counter 厌氧室:Anaerobic chamber 高压灭菌器:Autoclave machine 空气采样器:Air sampler 这些仪器设备在实验室中扮演着重要角色,帮助科研人员更高效地进行实验。
𞥊觉饮验服务全解析 探索动物实验服务的奥秘!无论是大小动物的手术模型,还是药物诱导模型,我们都能为您提供专业的评价检测。这些检测包括行为学检测 、影像检测𘣀生化生理指标检测ꧭ,全方位确保实验数据的准确性。 쥜觻胞实验方面,我们提供细胞培养죀细胞爬片、细胞转染等一系列服务,助力您的研究更上一层楼。 즭䥤,我们还擅长病例学检测,包括硬组织切片、免疫组化等,为您的研究提供有力的支持。 ᦗ 论您需要分子生物学检测还是蛋白相关检测,我们都能满足您的需求。荧光定量PCR、miRNA检测、Western Blot等,都是我们的拿手好戏。 ⚡最后,我们还提供快速检测服务,如ELISA检测、生化检测等,以及组学服务,如基因组学、转录组学等,助您全面了解生物体的状态。 选择我们,就是选择了专业与信赖!让我们一起开启动物实验的新篇章吧!
Lipo2K转染秘籍劣## 转染前的准备工作 ꊧ𛆨铺板密度:这个可是关键!根据Lipofectamine 2000(Lipo2K)的说明书,不同孔板的铺板密度有不同的建议。我用的是12孔板,铺板密度是2㗱05cells/孔。大概培养20小时后,细胞密度可以达到60-70%。转染前一定要检查细胞的生长状态,浓度最好在60-70%之间。太稀的话,转染后细胞会死亡(虽然我有一篇笔记里转化效率高,但因为细胞密度低,结果部分细胞死了);太浓的话,转染试剂无法有效输送到每个细胞中。 铺板的均匀度:这个对我来说是个难题。底部细胞密集而四周稀疏会影响转染效果。我最近发现一个有效的方法,就是把稀释好的细胞悬液充分混匀,加入孔板后不要晃动,静置5-10分钟。这样铺出来的板子特别均匀!不过我只在24孔板和12孔板这样试过,96孔板可能还是需要敲打一下。 培养时间:铺完板子后大约16-24小时就可以做转染了,注意观察细胞状态。 培养基是否含抗生素:说明书建议使用不含抗生素的培养基铺板,但对于293T细胞来说,含抗生素的培养基也可以使用。 质粒DNA转染 准备质粒:这个过程一定要保证卫生! 质粒的量:根据说明书给出的建议质粒用量和Lipo2K用量,实际用量可以根据需求调整。 制备复合物(以12孔为例): 使用50 不含血清的Opti-MEM I培养基(或其他不含血清的培养基)稀释1ug DNA。轻轻混匀。 使用前轻轻混匀Lipo2K,然后取4在50 Opti-MEM I培养基中稀释。 混合(1)和(2)(总体积=100)。轻轻混匀并在室温下孵育15-20分钟(溶液可能变得浑浊)。注意:Lipo2K加入后会开始产生纳米球,应尽快将稀释好的Lipo2K加入混匀的质粒中。 将100 复合物轻轻添加至含有待转染细胞的孔中。通过轻柔的摇动平板轻轻混匀。 培养基可在4-6小时后更换(换液有助于减少Lipo2K转染导致的细胞毒性,对于293T细胞,不换也可以)。 将培养板放回细胞培养箱即可。18-48小时可见GFP表达。 希望这些步骤能帮到你,祝你实验顺利!
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